Меню Рубрики

Мук методы анализа питьевая вода

Купить МУК 4.2.671-97 — бумажный документ с голограммой и синими печатями. подробнее

Распространяем нормативную документацию с 1999 года. Пробиваем чеки, платим налоги, принимаем к оплате все законные формы платежей без дополнительных процентов. Наши клиенты защищены Законом. ООО «ЦНТИ Нормоконтроль».

Наши цены ниже, чем в других местах, потому что мы работаем напрямую с поставщиками документов.

  • Срочная курьерская доставка (1-3 дня)
  • Курьерская доставка (7 дней)
  • Самовывоз из московского офиса
  • Почта РФ

Методические указания устанавливают методы микробиологического анализа питьевой воды по нормируемым показателям СанПиН 2.1.4.559-96 «Питьевая вода. Гигиенические требования к качеству воды централизованных систем питьевого водоснабжения. Контроль качества». Методические указания являются обязательными для контроля качества питьевой воды в отношении ее эпидемической безопасности при проведении государственного и производственного контроля, а также сертификационных испытаний, и распространяются на все лаборатории, выполняющие эти исследования, вне зависимости от подчиненности и форм собственности.

Введены к СанПиН 2.1.4.559-96 «Питьевая вода. Гигиенические требования к качеству воды централизованных систем питьевого водоснабжения. Контроль качества». Дата введения: с момента утверждения.

В связи с введением в действие с 1 июля 2001 Методических указаний МУК 4.2.1018-01 «Санитарно-микробиологический анализ питьевой воды», утвержденных Главным государственным санитарным врачом РФ 9 февраля 2001 г., настоящие указания признаны утратившими силу.

3. Отбор, хранение и транспортирование проб

4. Оборудование, расходные материалы, реактивы, питательные среды

5. Приготовление питательных сред и реактивов

7. Методика работы при использовании мембранных фильтров

8.1. Определение общего числа микроорганизмов, образующих колонии на питательном агаре

8.2. Определение общих и термотолерантных колиформных бактерий методом мембранной фильтрации

8.3. Определение общих и термотолерантных колиформных бактерий титрационным методом

8.4. Определение споровых сульфитредуцирующих клостридий методом мембранной фильтрации

8.5. Определение споровых сульфитредуцирующих клостридий прямым методом

8.6. Определение колифагов прямым методом

8.7. Определение колифагов титрационным методом

×

Дата введения: 04.07.1997
Добавлен в базу: 01.09.2013
Заверение срока действия: 01.07.2001
Актуализация: 01.01.2019
04.07.1997 Утвержден Председатель Госкомсанэпиднадзора России — Главный государственный санитарный врач Российской Федерации
Издан Информационно-издательский центр Минздрава России 1997 г.
Разработан НИИ экологии человека и гигиены окружающей среды им. А.М.Сысина РАМН
Разработан Федеральный центр государственного санитарно-эпидемиологического надзора
Разработан Аналитический центр контроля качества воды РОСА
Разработан Московский НИИ гигиены им. Ф.Ф. Эрисмана Минздрава РСФСР
Разработан НИИ коммунального водоснабжения и очистки воды

Чтобы бесплатно скачать этот документ в формате PDF, поддержите наш сайт и нажмите кнопку:

Государственная система санитарно-эпидемиологического нормирования Российской Федерации

4.2. МЕТОДЫ КОНТРОЛЯ. БИОЛОГИЧЕСКИЕ И МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИЕ ФАКТОРЫ

Методы санитарно-микробиологического анализа питьевой воды

Методические указания МУК 4.2.671-97

Минздрав России Москва* 1997

4.2. МЕТОДЫ КОНТРОЛЯ. БИОЛОГИЧЕСКИЕ И МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИЕ ФАКТОРЫ

Методические указания МУК 4.2.671-97

препараты зарубежного производства должны иметь международный сертификат качества ISO 9000 или EN 29 ООО.

При использовании следует руководствоваться рекомендациями фирмы-производителя.

Все обезвоженные коммерческие питательные среды и препараты отечественного производства должны иметь сертификат соответствия, паспорт и инструкцию по применению.

Pseudomonas aeruginosa или Pseudomonas fluorescens

Контрольные штаммы получают в Российском Государственном институте медицинских и биологических препаратов им. Л. А. Тарасевича или Областном Центре госсанэпиднадзора.

5. Приготовление питательных сред и реактивов

Предпочтительно использование стандартизованных сухих питательных сред промышленного производства.

При использовании промышленных сухих питательных сред их приготавливают в соответствии с указаниями изготовителя на этикетке. В этом случае следует соблюдать способ применения и срок хранения питательных сред, указанных на упаковках.

Сухие питательные среды хранят в сухих помещениях, в темноте, при комнатной температуре. Открытые упаковки тщательно закупоривают. Среды с измененным внешним видом (уплотненные, с комками), а также с истекшим сроком годности не используют.

Для приготовления растворов, реактивов и питательных сред применяют воду дистиллированную по ГОСТу 6709—72.

Питательные среды приготовляют в посуде из инертного материала.

Учитывая возможное изменение pH питательных сред после кипячения и стерилизации при приготовлении сред устанавливают pH на 0,2—0,3 выше заданного, что определяют опытным путем для каждой среды. Окончательный контроль pH проводят в готовой среде при температуре 25 °С с использованием pH-метра (жидкие среды) или бумажных индикаторов (агаризованные среды).

После стерилизации питательные среды оставляют для охлаждения при комнатной температуре.

Температура сред, хранящихся в холодильнике, перед посевом должна быть доведена до комнатной.

При необходимости разлить готовую питательную среду в чашки Петри, ее следует охладить до температуры 50—60 °С.

Готовые полужидкие питательные среды хранят при комнатной температуре.

500 г мясного фарша без жира и сухожилий заливают 1 л дисгилированной воды, настаивают 12 часов на холоде или 1 час в водяной бане при 50—60 °С. Затем настой кипятят, фильтруют через марлю или вату и опять доводят дисгилированной водой до 1 л, разливают во флаконы, стерилизуют при (120 ±2) °С (10 5 ПА) 20 мин и приступают непосредственно к приготовлению мясо-пептонного бульона или других питательных сред.

5.3.1. Мясо-пептонный бульон (МПБ)

К 1 л мясной воды прибавляют 10 г пептона и 5 г натрия хлористого, нагревают до полного растворения пептона и соли, устанавливают pH (7,2—7,4), осветляют, фильтруют и разливают в пробирки или во флаконы в количествах, необходимых для анализа, закрывают ватными пробками и стерилизуют при (120±2) °С (10 5 ПА) 20 мин.

5.3.2. Питательный бульон из заменителей мяса (ПБ)

Готовят из заменителей мяса (мясного экстракта, рыбного гидролизата или других) по способу, указанному на этикетке.

Для приготовления десятикратного питательного бульона количество пептона и хлористого натрия (п. 5.3.1) или сухого препарата (п. 5.3.2) увеличивают в 10 раз.

5.4.1. Питательный агар промышленного производства

Готовят из сухого препарата по способу, указанному на этикетке.

5.4.2. Мясо-пептонный агар (МПА)

1,5 % МПА — к 1 л мясо-пептонного бульона прибавляют 15 г агара в волокнах или порошке, нагревают до полного растворения, корректируют pH (7,2—7,4), осветляют, фильтруют в горячем виде через ватно- марлевый фильтр и разливают во флаконы или пробирки в количествах, необходимых для анализа. Стерилизуют при (120±2) e C (10 5 ПА) 20 минут.

2 % МПА готовят, увеличивая концентрацию агара до 20 г на тот же объем МПБ.

5.4.3. Питательный агар на основе (ПБ) из заменителей мяса

Готовят по п. 5.4.2, заменяя мясо-пептонный бульон на питательный бульон из заменителей мяса.

2 %-ный питательный агар готовят, увеличивая навеску сухого препарата на 1/4 от прописи.

Готовят из сухого препарата по способу, указанному на этикетке.

Для повышения дифференцирующих свойств среды в готовую и охлажденную до 60—70 °С среду перед разливкой в чашки допускается прибавлять на 100 мл среды 0,2 мл 5 %-ного спиртового раствора основного фуксина.

Если на поверхности среды заметны следы влаги, чашки перед посевом необходимо подсушить. Срок хранения чашек со средой не более 2—3 суток в темноте, раствора фуксина — не более 1-го месяца.

5.5.2. Модификация среды с добавлением розоловой кислоты

При исследовании питьевой обеззараженной воды с преобладанием микрофлоры, не относящейся к бактериям кишечной группы, помимо фуксина, допускается добавление на 100 мл среды Эндо 0,2 мл 5 %-то спиртового раствора розоловой кислоты. Срок хранения розоловой кислоты — не более 1-го месяца.

10 г пептона, 5 г натрия хлористого, 5 г лактозы (глюкозы) растворяют при нагревании в 1 л дистиллированной воды. После растворения ингредиентов устанавливают. pH (7,4—7,6),

разливают по 10 мл в пробирки, стерилизуют при (112±2) °С (5,10 4 ПА) 12 минут.

Для приговления концентрированной лакгозо-пептонной (глюкозо-пептонной) среды все ингредиенты, кроме воды, увеличивают в 10 раз, разливают по 1 мл в пробирки и по 10 мл во флаконы.

57. Питательные среды для подтверждения способности ферментировать лактозу или маннит (глюкозу) до кислоты и газа

5.7.1. Полужидкая среда с лактозой или маннитом (глюкозой) Готовят из сухого препарата по способу, указанному на

этикетке. Срок хранения — не более 2-х недель.

5.7.2. Полужидкая среда с лактозой или маннитом (глюкозой) Готовят при отсутствии сухого препарата.

В 1 л дистиллированной воды растворяют 10 г пептона, 5 г натрия хлористого, 4—5 г агар-агара, доводят до кипения, устанавливают pH (7,2—7,4), добавляют 1 мл 1,6 % спиртового раствора бромтимолового синего. Стерилизуют при (120±2) °С (10 s ПА) 20 мин. В расплавленную среду вносят 5 г лактозы или маннита (глюкозы), нагревают до кипения, разливают в стерильные пробирки на высоту 3—5 см и стерилизуют при (112±2) °С (5,КГ ПА) 12 мин. Срок хранения — не более 2-х недель.

Правильно приготовленная среда — зеленого цвета с синеватым оттенком (цвет бутылочного стекла). Посев производят уколом до дна пробирки. При образовании кислоты цвет среды изменяется в желтый, при газообразовании газ скапливается или по уколу, или на поверхности, или в толще среды появляются разрывы. При инкубации посевов более 5 часов газ может улетучиться. В таких случаях на присутствие газа указывают оставшиеся в толще среды «карманы» — потемнения среды на месте бывшего пузырька газа.

5.7.3. Лактозо-пептонная среда по п. 5. в При использовании в качестве подтверждающей следует добавить 2 мл 1,6 %-ного неспиртового раствора индикатора бромтимолового синего на 1000 мл среды.

‘Глюкозу используют при отсутствии маннита.

Разливают по 4—5 мл в пробирки с поплавками или комочками ваты.

5.7.4. СИБ-лактоэа или СИБ-маннит (глюкоза)

Готовят по прописи завода-изготовителя.

58. Реактивы для оксидазного теста

1 вариант — 1 %-ный водный раствор тетраметил-п-фенилендиамина гидрохлорида.

2 вариант — 1 %-ный реактив — 1 %-ный спиртовой раствор а-нафтола, 2-ой реактив — 1 %-ный водный раствор фенилен-диаминового соединения.

Растворы сохраняют в темных флаконах с притертыми пробками: 1-ый — до одного месяца, 2-ой — до одной недели. Перед употреблением (при работе со 2 вариантом) к трем частям первого раствора добавляют семь частей второго раствора.

Вместо реактива можно использовать системы индикаторные бумажные (СИБ-оксидаза) или бумажки, приготовленные заранее.

Приготовление бумажек для оксидазного теста: 30 мг а-нафтола растворить в 2,5 мл 96 %-ного этилового спирта, добавить 7,5 мл дистиллированной воды и затем 50 мг диэтиланилинсульфата. Смочить фильтровальную бумажку, высушить и хранить в темноте в черной бумаге не более 6 месяцев.

С каждой новой партией реактивов, а также периодически в процессе хранения реактивов или готовой бумажной системы следует проводить контрольные испытания с тест-культурами известных микроорганизмов, дающих положительную реакцию (Pseudomonas aeruginosa или Pseudomonas fluorescens) и отрицательную реакцию (Е. сой).

Основная среда. В 1000 мл стерильного расплавленного питательного агара (по п. 5.4) добавляют 10 г глюкозы, нагревают до растворения, разливают мерно во флаконы, автоклавируют при (112±2) °С 12 минут.

20 %-ный раствор сульфита натрия (Na2S03) и 8 %-ный раствор железа сернокислого закисного (Fe2S04) готовят непосредственно перед употреблением в стерильной посуде на стерильной дистиллированной воде. Раствор сульфита натрия

нагревают до полного растворения. Перед выполнением анализа в 100 мл расплавленной основной среды вносят 5 мл 20 %-ного раствора сульфита натрия, перемешивают, затем вносят 1 мл 8 %-ного раствора сернокислого железа, перемешивают и разливают с соблюдением правил стерильности в стерильные пробирки высоким столбиком (12—15 см) — для работы методом мембранной фильтрации, или во флаконы — для работы методом прямого посева.

Лабораторная посуда должна быть тщательно вымыта, ополоснута дистиллированной водой до полного удаления моющих средств и других посторонних примесей и высушена.

Пробирки, колбы, бутылки, флаконы должны быть заткнуты силиконовыми или ватно-марлевыми пробками и упакованы так, чтобы исключить загрязнения после стерилизации в процессе работы и хранения. Колпачки могут быть металлические, силиконовые, из фольги или плотной бумаги.

Флаконы для отбора проб закрывают силиконовыми, резиновыми и другими пробками, исключая ватно-марлевые, а также колпачками, изготовленными из фольги, плотной бумаги и др.

Новые резиновые пробки кипятят в 2 %-ном растворе натрия двууглекислого 30 мин и 5 раз промывают водопроводной водой (кипячение и промывание повторяют дважды). Затем пробки кипятят в дистиллированной воде 30 мин, высушивают, заворачивают в бумагу или фольгу и стерилизуют в паровом стерилизаторе. Резиновые пробки, использованные ранее, обеззараживают, кипятят 30 минут в водопроводной воде с нейтральным моющим средством, промывают в водопроводной воде, высушивают, монтируют и стерилизуют.

При приготовлении емкостей для отбора проб с притертой пробкой, между стенкой горлышка и пробкой следует вложить полоску тонкой бумаги.

Пипетки со вставленными тампонами из ваты должны быть уложены в металлические пеналы или завернуты в бумагу.

Чашки бактериологические в закрытом состоянии должны быть уложены в металлические пеналы или завернуты в бумагу. Бумага, используемая для обертывания лабораторной посуды, не должна разрушаться при стерилизации.

Подготовленную посуду стерилизуют в сушильном шкафу при 160—170 °С 1 час, считая с момента достижения указанной температуры. Простерилизованную посуду можно вынимать из сушильного шкафа только после его охлаждения ниже 60 °С.

Материалы и лабораторная посуда, имеющие элементы материалов, разрушающихся при температуре 160 °С (резина и т. п.), следует стерилизовать в паровом стерилизаторе при температуре (121±2) °С (10 5 ПА) 20 мин.

После выполнения анализа все использованные чашки и пробирки обеззараживают в автоклаве при (126±2) °С 60 мин. Пипетки обеззараживают кипячением в 2 %-ном растворе NaHC03-

После охлаждения удаляют остатки сред, затем чашки и пробирки замачивают, кипятят в водопроводной воде и моют с последующим ополаскиванием дистиллированной водой.

Прежде чем приступить к посеву, пробу необходимо тщательно перемешать и обработать горящим тампоном край емкости с тем, чтобы устранить его возможное загрязнение во время транспортирования. На используемых для посева пробирках и чашках необходимо обозначить номер пробы, объем воды или разбавление, дату посева.

Перед каждым отбором новой порции воды для анализа пробу необходимо перемешать стерильной пипеткой.

7. Методика работы при использовании мембранных фильтров

Мембранные фильтры должны быть подготовлены к анализу в соответствии с указаниями завода-изготовителя.

Фильтровальный аппарат обтирают ватным тампоном, смоченным спиртом ректификованным, и фламбируют. После охлаждения на нижнюю часть фильтровального аппарата (столик) кладут фламбированным пинцетом стерильный мембранный фильтр, прижимают его верхней частью прибора (стаканом, воронкой) и закрепляют устройством, предусмотренным конструкцией прибора.

В верхнюю часть прибора для фильтрования наливают точно отмеренный объем воды, затем создают вакуум в нижней части прибора.

При посеве нескольких объемов одной пробы следует фильтровать через один фильтровальный аппарат сначала меньшие, а затем большие объемы воды, меняя каждый раз фильтры.

При фильтровании 1 мл исследуемой воды или ее разбавления следует в воронку налить предварительно не менее 10 мл стерильной водопроводной воды, а затем внести анализируемую воду.

После окончания фильтрования воронку снимают, фильтр осторожно приподнимают за край фламбированным пинцетом при сохранении вакуума для удаления излишка воды на нижней стороне фильтра, а затем переносят его, не переворачивая, на питательную среду, разлитую в чашки Петри, избегая пузырьков воздуха между средой и фильтром. Поверхность фильтра с оседавшими на ней бактериями должна быть обращена вверх. Вакуум отключают до внесения следующей порции анализируемой воды.

Под каждым фильтром на дне чашки делают надпись с указанием объема профильтрованной воды, даты посева и номера пробы. На одну чашку можно поместить 3—4 фильтра с условием, чтобы фильтры не соприкасались.

Если исследуемая вода содержит большое количество взвешенных веществ, то ее фильтруют сначала через предварительный мембранный фильтр для удаления крупной взвеси, который помещают в фильтровальный прибор, накладывая на фильтр для бактериологического анализа. После окончания фильтрования фильтры переносят на плотную питательную среду раздельно и при выведении результатов анализа учитывают колонии, выросшие на обоих фильтрах.

8.1.1. Определение понятия показателя

Метод определяет в питьевой воде общее число ме-зофильных аэробных и факультативно анаэробных микроорганизмов (ОМЧ), способных образовывать колонии на питательном агаре при температуре 37 °С в течение 24 часов, видимые с увеличением в 2 раза.

Из каждой пробы должен быть сделан посев не менее двух объемов по 1 мл.

После тщательного перемешивания пробы воды вносят по 1 мл в стерильные чашки Петри, слегка приоткрывая крышки. Сразу же после внесения воды в каждую чашку вливают 6—8 мл (на чашку диаметром 90—100 мм) расплавленного и остуженного до 45—46 °С питательного агара после фламбирования края посуды, в которой он содержится. Затем быстро смешивают содержимое чашек, равномерно распределяя по всему дну, избегая образования пузырьков воздуха, попадания агара на края и крышку чашки. Эту процедуру производят на горизонтальной поверхности, где чашки оставляют до застывания агара.

Расплавленный агар на период проведения анализа помещают в водяную баню или термостат, поддерживающие температуру 45—46 °С.

Тонкий слой агара увеличивает эффективность учета сапрофитной микрофлоры за счет лучших условий для роста аэробных бактерий, преобладающих в воде. Колонии вырастают более крупными, легко подсчитываемыми на фоне прозрачного тонкого слоя агара. Ограничен рост расплывчатых колоний.

После застывания агара чашки с посевами помещают в термостат вверх дном и инкубируют при температуре (37±1) °С в течение 24±2 часов.

8.1.3. Вычисление и представление результатов

Должны быть подсчитаны все выросшие на чашке колонии, наблюдаемые при увеличении в 2 раза. Подсчет следует производить только на тех чашках, на которых выросло не более 300 изолированных колоний.

Подсчитанное количество колоний на каждой чашке суммируют и делят на два. Результат выражают числом колоний образующих единиц (КОЕ) в 1 мл исследуемой пробы воды и заносят в протокол.

Результат дают на основании подсчета колоний на одной чашке, если на другой подсчет невозможен.

Если на всех чашках имеет место рост расплывчатых колоний, не распространяющийся на всю поверхность чашки, или выросло более 300 колоний и анализ нельзя повторить, подсчитывают сектор чашки с последующим пересчетом на всю поверхность. В этих случаях в протоколе отмечают «число КОЕ в 1 мл — ориентировочно».

Если подсчет колоний на чашках невозможен, то в протоколе отмечают: «сливной рост*.

На качество результата метода влияет соблюдение деталей техники анализа (срока хранения пробы, температуры и времени инкубации посевов, правил учета результатов, качество питательного агара).

Читайте также:  Практическая работа по химии анализ воды

82. Определение общих и термотолерантных копиформных бактерий методом мембранной фильтрации

8.2.1. Определение понятия показателя

К общим колиформным бактериям относятся грамотрица-тельные не образующие спор палочки, не обладающие оксидаз-ной активностью, ферментирующие лактозу или маннит с образованием альдегида, кислоты и газа при температуре 37 °С в течение 24-х часов.

Термотолерантные колиформные бактерии обладают всеми признаками общих колиформных бактерий, которые кроме того способны ферментировать лактозу до кислоты и газа при температуре 44 °С в течение 24-х часов.

Метод основан на фильтрации установленного объема воды через мембранные фильтры, выращивании посевов на селективной питательной среде с лактозой и последующей идентификации колоний по культуральным и биохимическим свойствам.

При исследовании воды на выходе с водопроводных сооружений и в распределительной сети необходимо анализировать 3 объема по 100 мл.

Если анализируемая вода стабильно соответствует нормативам, то допустима фильтрация 300 мл воды через один фильтр.

При необходимости возможно увеличение количества фильтруемых объемов для получения изолированных колоний на фильтре (например, из водопроводной сети можно фильтровать 10, 40, 100, 150 мл воды).

Необходимый точно отмеренный объем воды фильтруют через мембранные фильтры с соблюдением требований, изложенных в п. 7.

Фильтры помещают на среду Эндо, приготовленную по п. 5.5.1 или п. 5.5.2. Чашки с фильтрами ставят в термостат

М54 Методы санитарно-микробиологического анализа питьевой воды: Методические указания.—М.: Информационно-издательский центр минздрава России, 1997.-36 с.

1. Разработаны авторским коллективом в составе: Недачин А. Е., Артемова Т. 3., Доскина Т. В., Дмитриева Р. А, Тишкова Н. Ю., Сидоренко С. Г. (НИИ экологии человека и гигиены окружающей среды им. А. Н. Сысина Российской Академии Медицинских Наук).

При участии Трухиной Г. М. (Московский НИИ гигиены им. Ф. Ф. Эрисмана Минздрава Российской Федерации); Каш каровой Г. П., Ахапкиной Е. Н. (Аналитический центр контроля качества воды «Роса*); Кривопаловой Н. С., Воронцовой Г. В., Сорокиной Р. С. (Федеральный центр Государственного санитарно-эпидемиологического надзора), Русановой Н. А (НИИ коммунального водоснабжения и очистки воды).

2. Утверждены и введены в действие Председателем Госкомса-нэпиднадзора России — Главным государственным санитарным врачом Российской Федерации 4 июля 1997 года.

3. Введены впервые к СанПиН 2.1.4.559—96 «Питьевая вода. Гигиенические требования к качеству воды централизованных систем питьевого водоснабжения. Контроль качества*.

©Информационно-издательский центр Минздрава России

дном вверх и инкубируют посевы при температуре (37±1) °С в течении 24 ±2 часов.

Результат считается отрицательным, если на фильтрах вообще не выросли колонии, или выросли колонии с неровными краями и поверхностью (пленчатые, губчатые, плесневые, прозрачные, слизистые).

При сливном росте на всех фильтрах проводят рассев на среде Эндо для получения изолированных колоний обычными бактериологическими методами.

При наличии типичных лактозоположительных колоний, дающих отпечаток на обратной стороне мембранного фильтра и среде — темно-красных, красных с металлическим блеском и без него, выпуклых с красным центром и других оттенков, а также лактозоотрицательных — розовых без отпечатков, подсчитывают число колоний каждого типа.

Для идентификации отбирают не менее 5 колоний каждого вида, делают их посев на скошенный питательный агар, либо на чашки секторами, инкубируют при температуре (37±1) °С 16—18 часов. При росте колоний одного вида исследуют не менее 10 колоний.

Все дальнейшие биохимические тесты проводят только с чистыми субкультурами.

В качестве подтверждающих тестов используют оксидазный тест и тест образования кислоты и газа при ферментации лактозы или маннита (глюкозы).

Для определения оксидазной активности поместить на фильтровальную бумагу 2—3 капли свеже приготовленного реактива для оксидазного теста п. 58. Заранее приготовленные бумажки для оксидазного теста смачивают дистиллированной водой. Стеклянной палочкой или платиновой петлей (металлическая петля может дать ложно положительную реакцию) помещают мазок свежей культуры, выращенной на питательной агаровой среде, на подготовленную фильтровальную бумагу. Реакция считается положительной, если в течение 10—30 секунд появляется фиолетово-коричневое (п. 58, вариант 1) или синее (п. 58, вариант 2) окрашивание. Более позднюю реакцию не учитывают.

При посеве секторами оксидазный тест допустимо выполнить, накапливанием реактива на часть сектора.

В тех случаях, когда на фильтрах выросло более 10 колоний, допустимо оксидазный тест выполнить, помещая мембранный

3. Отбор, хранение и транспортирование проб. 5

4. Оборудование, расходные материалы, реактивы, питательные среды . 7

5. Приготовление питательных сред и реактивов. 10

6. Подготовка к анализу. 15

7. Методика работы при использовании мембранных фильтров. 16

8.1. Определение общего числа микроорганизмов, образующих

колонии на питательном агаре. 17

8.2. Определение общих и термотолерантных колиформных бактерий

методом мембранной фильтрации. 19

8.3. Определение общих и термотолерантных колиформных бактерий

8.4. Определение споровых сульфитредуцирующих клостридий

методом мембранной фильтрации. 26

8.5. Определение споровых сульфитредуцирующих клостридий

8.6. Определение колифагов прямым методом . 29

8.7. Определение колифагов титрационным методом. 30

Главный государственный санитарный врач Российской Федерации Г. Г. Онищенко

Дата введения: с момента утверждения

4.2. МЕТОДЫ КОНТРОЛЯ. БИОЛОГИЧЕСКИЕ И МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИЕ ФАКТОРЫ

Методические указания устанавливают методы микробиологического анализа питьевой воды по нормируемым показателям СанПиН 2.1.4,559—96 «Питьевая вода. Гигиенические требования к качеству воды централизованных систем питьевого водоснабжения. Контроль качества». Настоящие методические указания являются обязательными для контроля качества питьевой воды в отношении ее эпидемической безопасности при проведении государственного и производственного контроля, а также сертификационных испытаний, и распростаняются на все лаборатории, выполняющие эти исследования, вне зависимости от подчиненности и форм собственности.

Издание официальное Настоящие методические указания не

могут быть полностью или частично воспроизведены, тиражированы и распространены без разрешения Департамента госсанэпиднадзора Минздрава России.

В настоящих методических указаниях использованы ссылки на следующие документы;

2.1. СанПиН 2.1.4.559—96 «Питьевая вода. Гигиенические требования к качеству воды централизованных систем питьевого водоснабжения. Контроль качества».

2.2. ИСО 9308-1: 1990. Качество воды. Обнаружение и подсчет колиформных организмов, термотолерантных колифор-мных организмов и предполагаемых Е. coli.—часть 1: Метод мембранной фильтрации.

2.3. Обнаружение и подсчет колиформных организмов, термотолерантных колиформных организмов и предполагаемых Е. coli—Часть 2: Титрационный метод (определение наиболее вероятного числа).

2.4. ИСО 6222-1988. Качество воды. Проведение анализа на наличие жизнеспособных микроорганизмов.

2.5. ИСО 6461-2: 1986. Качество воды. Обнаружение и подсчет спор сульфитредуцирующих анаэробов (клостридий).— Часть 2: Метод мембранной фильтрации.

2.6. Методические указания по санитарно-микробиологическому анализу воды поверхностных водоемов. Москва, 1981, № 2285—81.

2.7. ГОСТ 18963-73. Вода питьевая. Методы санитарно-бактериологического анализа.

2.8. Руководство по контролю качества питьевой воды. ВОЗ. Женева 1994. Часть 1.

3. Отбор, хранение и транспортирование проб

3.1. Общие требования к отбору проб

Для отбора проб воды используют специально предназначенную для этих целей одноразовую посуду или емкости многократного применения, изготовленные из материалов, не влияющих на жизнедеятельность микроорганизмов.

Емкости должны быть оснащены плотно закрывающимися пробками (силиконовыми, резиновыми или из других материалов) и защитным колпачком (из алюминиевой фольги, плотной бумаги).

Многоразовая посуда, в том числе пробки, должна выдерживать стерилизацию сухим жаром или автоклавированием.

Пробу отбирают в стерильные емкости с соблюдением правил стерильности. Емкость открывают непосредственно

перед отбором, удаляя пробку вместе со стерильным колпачком. Во время отбора пробка и края емкости не должны чего-либо касаться. Ополаскивать посуду запрещается.

При исследовании воды из распределительных сетей отбор проб из крана производят после предварительной его стерилизации обжиганием и последующего спуска воды не менее 10 минут при полностью открытом кране. При отборе пробы напор воды может быть уменьшен. Пробу отбирают непосредственно из крана без резиновых шлангов, водораспределительных сеток и других насадок.

Если через пробоотборный кран происходит постоянный излив воды, отбор проб производят без предварительного обжига, не изменяя напора воды и существующей конструкции (при наличии силиконовых или резиновых шлангов).

Если отбирают воду после обеззараживания химическими реагентами, то для нейтрализации остаточного количества дезинфектанта в емкость, предназначенную для отбора проб, вносят до стерилизации натрий серноватистокислый в виде кристаллов или концентрированного раствора из расчета 10 мг на 500 мл воды.

После наполнения емкость закрывают стерильной пробкой и колпачком.

При заполнении емкостей должно оставаться пространство между пробкой и поверхностью воды, чтобы пробка не смачивалась при транспортировании.

При отборе проб в одной и той же точке для различных целей, первыми отбирают пробы для бактериологических исследований.

Отобранную пробу маркируют и сопровождают актом отбора проб воды с указанием места, даты, времени забора и другой информации.

32. Хранение и транспортирование проб

К исследованию проб в лаборатории необходимо приступить как можно быстрее с момента отбора.

Доставка проб осуществляется в контейнерах-холодильниках при температуре +4—+10 °С. В холодный период года контейнеры должны быть снабжены термоизолирующими прокладками, обеспечивающими предохранение проб от промерзания. При соблюдении указанных условий срок начала исследований от момента отбора проб не должен превышать 6 часов.

Если пробы нельзя охладить, их анализ следует провести в течение 2-х часов после забора.

Если не может быть соблюдено время доставки пробы и температура хранения, анализ пробы проводить не следует.

Пробы питьевой воды должны доставляться в отдельных продезинфицированных контейнерах.

4. Оборудование, расходные материалы, реактивы, питательные среды

Термостат, способный поддерживать рабочую температуру 37 °С и обеспечивать градиент температуры в камере ±1 °С Термостат, способный поддерживать рабочую температуру 44 °С и обеспечивать градиент температуры в камере ±1 °С Термостат или водяная баня, способные поддерживать рабочую температуру в камере 44 °С с градиентом температуры в камере ±0,5 °С

Водяная баня, обеспечивающая поддержание рабочего температурного режима 75 °С с градиентом температуры ±5 °С Водяная баня или термостат, способные поддерживать температуру 45—50 °С (для питательных сред)

Прибор для мембраной фильтрации под вакуумом с диаметром фильтрующей поверхности 35 или 47 мм; вакуумный насос для создания разрежения 0,5—1,0 атм.; прибор вакуумного фильтрования ПВФ-35 и вакуумный насос СП-4-044 отечественного производства

Весы лабораторные общего назначения 4-го класса точности, наибольший предел взвешивания 200 г, допускается погрешность не более 0,02 г

Весы лабораторные общего назначения 4-го класса точности, наибольший предел взвешивания 1 кг, допускается погрешность не более 0,1 г

PH-метр, обеспечивающий измерение с погрешностью до 0,01 Дистиллятор, обеспечивающий качество дистиллированной воды не ниже ГОСТа 6709—72 Лупа измерительная 2 х

Шкаф сушильный, стерилизационный, обеспечивающий температуру +180 °С

Стерилизатор паровой с режимами стерилизации от температуры +100 °С (текучим паром) до +126 °С (под давлением) Холодильник бытовой

Вытяжной шкаф для работы с хлороформом при проведении анализа на колифаги

Магнитные мешалки с подогревом до 300 °С для варки сред, либо другой нагревательный прибор Дозаторы для разлива питательных сред Дозаторы пипеточные для использования в анализе. Примечание: к применению допускается только измерительное оборудование, вошедшее в Государственный реестр.

42. Мелкое оборудование и расходные материалы

Мембранные фильтры нитрат или ацетат целлюлозные для микробиологических целей с диаметром пор 0,45 мкм и размером 35 или 47 мм: отечественные фильтрующие мембраны Владипор МФАС-ОС-1, МФАС-ОС-2, МФА-МА (номер 4—6); или аналогичные мембраны зарубежного производства, имеющие международный сертификат качества ISO 9000 или EN 29 000 Горелки газовые или спиртовки

Индикаторы бумажные для определения pH в диапазоне 6—8 с интервалом определения 0,2 Петли бактериологические

Пинцеты для работы с мебранными фильтрами Штативы для пробирок

Фольга алюминиевая, колпачки силиконовые, металлические Лабораторная посуда стеклянная либо одноразового использования (колбы, цилиндры, пипетки, флаконы, стаканы, чашки Петри, пробирки, стеклянные палочки, поплавки, емкости для отбора проб) Пробки различных размеров: силиконовые, резиновые и другие, выдерживающие стерилизацию сухим жаром или автоклавированием

Бумага фильтровальная Вата хлопковая

Карандаши или фломастеры по стеклу Лейкопластырь

Марля медицинская в кусках или бинты Перчатки резиновые

Все химические реактивы должны соответсвовать квалификации не ниже ч. д. а.

Железо сернокислое закисное ГОСТ 4148—78

Кислота соляная ГОСТ 3118—77

Натрий серноватистокислый ГОСТ 4215—66

Натрий хлористый Натрий гидрат окиси Спирт этиловый ректификованный 96 %-яый, медицинский Спирт этиловый технический для обработки столов, термостатов, холодильников и другого инвентаря Глюкоза Лактоза Маннит

Натрий сернистокислый (сульфит натрия) а-нафтол

Фенилендиаминовые соединения* (тетрамегил — п- фенилендиамин гидрохлорид, диметил-п-фенилендиамин солянокис-лыи, диметил-п-фенилендиамин, дифенил-п-фенилендиа-мин и другие)

Фуксин основной* ТУ 6—09—4119—75

Примечание: вещества обладают канцерогенным и мутагенным действием, работать с соблюдением мер предосторожности.

4.4. Питательные среды промышленного производства Агар Эндо сухой

Сухой препарат с индикатором ВР и лактозой

Сухой препарат с индикатором ВР и маннитом

Сухой препарат с индикатором ВР и глюкозой

Пептон сухой ферментативный для

Системы индикаторные бумажные (СИБ):

Допускаются к использованию коммерческие питательные среды, диагностические препараты и системы идентификации производства зарубежных фирм, предназначенные для целей описываемых методов. Питательные среды и биологические

источник

Документ по состоянию на август 2014 г.

Утверждаю
Главный государственный
санитарный врач
Российской Федерации
Г.Г.ОНИЩЕНКО
4 июля 1997 года

Дата введения — с момента
утверждения

1. Разработаны авторским коллективом в составе: Недачин А.Е., Артемова Т.З., Доскина Т.В., Дмитриева Р.А., Тишкова Н.Ю., Сидоренко С.Г. (НИИ экологии человека и гигиены окружающей среды им. А.Н. Сысина Российской академии медицинских наук).

При участии Трухиной Г.М. (Московский НИИ гигиены им. Ф.Ф. Эрисмана Минздрава Российской Федерации); Кашкаровой Г.П., Ахапкиной Е.Н. (Аналитический центр контроля качества воды «Роса»); Кривопаловой Н.С., Воронцовой Г.В., Сорокиной Р.С. (Федеральный центр Государственного санитарно — эпидемиологического надзора), Русановой Н.А. (НИИ коммунального водоснабжения и очистки воды).

2. Утверждены и введены в действие Председателем Госкомсанэпиднадзора России — Главным государственным санитарным врачом Российской Федерации 4 июля 1997 года.

3. Введены впервые к СанПиН 2.1.4.559-96 «Питьевая вода. Гигиенические требования к качеству воды централизованных систем питьевого водоснабжения. Контроль качества».

Методические указания устанавливают методы микробиологического анализа питьевой воды по нормируемым показателям СанПиН 2.1.4.559-96 «Питьевая вода. Гигиенические требования к качеству воды централизованных систем питьевого водоснабжения. Контроль качества». Настоящие Методические указания являются обязательными для контроля качества питьевой воды в отношении ее эпидемической безопасности при проведении государственного и производственного контроля, а также сертификационных испытаний, и распространяются на все лаборатории, выполняющие эти исследования, вне зависимости от подчиненности и форм собственности.

В настоящих Методических указаниях использованы ссылки на следующие документы:

2.1. СанПиН 2.1.4.559-96 «Питьевая вода. Гигиенические требования к качеству воды централизованных систем питьевого водоснабжения. Контроль качества».

2.2. ИСО 9308-1: 1990. Качество воды. Обнаружение и подсчет колиформных организмов, термотолерантных колиформных организмов и предполагаемых E. coli. — часть 1: Метод мембранной фильтрации.

2.3. Обнаружение и подсчет колиформных организмов, термотолерантных колиформных организмов и предполагаемых E. coli. — Часть 2: Титрационный метод (определение наиболее вероятного числа).

2.4. ИСО 6222-1988. Качество воды. Проведение анализа на наличие жизнеспособных микроорганизмов.

2.5. ИСО 6461-2: 1986. Качество воды. Обнаружение и подсчет спор сульфитредуцирующих анаэробов (клостридий). — Часть 2: Метод мембранной фильтрации.

2.6. Методические указания по санитарно — микробиологическому анализу воды поверхностных водоемов. Москва, 1981, N 2285-81.

2.7. ГОСТ 18963-73. Вода питьевая. Методы санитарно — бактериологического анализа.

2.8. Руководство по контролю качества питьевой воды. ВОЗ. Женева 1994. Часть 1.

Для отбора проб воды используют специально предназначенную для этих целей одноразовую посуду или емкости многократного применения, изготовленные из материалов, не влияющих на жизнедеятельность микроорганизмов.

Емкости должны быть оснащены плотно закрывающимися пробками (силиконовыми, резиновыми или из других материалов) и защитным колпачком (из алюминиевой фольги, плотной бумаги).

Многоразовая посуда, в том числе пробки, должна выдерживать стерилизацию сухим жаром или автоклавированием.

Пробу отбирают в стерильные емкости с соблюдением правил стерильности. Емкость открывают непосредственно перед отбором, удаляя пробку вместе со стерильным колпачком. Во время отбора пробка и края емкости не должны чего-либо касаться. Ополаскивать посуду запрещается.

При исследовании воды из распределительных сетей отбор проб из крана производят после предварительной его стерилизации обжиганием и последующего спуска воды не менее 10 минут при полностью открытом кране. При отборе пробы напор воды может быть уменьшен. Пробу отбирают непосредственно из крана без резиновых шлангов, водораспределительных сеток и других насадок.

Если через пробоотборный кран происходит постоянный излив воды, отбор проб производят без предварительного обжига, не изменяя напора воды и существующей конструкции (при наличии силиконовых или резиновых шлангов).

Если отбирают воду после обеззараживания химическими реагентами, то для нейтрализации остаточного количества дезинфектанта в емкость, предназначенную для отбора проб, вносят до стерилизации натрий серноватистокислый в виде кристаллов или концентрированного раствора из расчета 10 мг на 500 мл воды.

После наполнения емкость закрывают стерильной пробкой и колпачком.

При заполнении емкостей должно оставаться пространство между пробкой и поверхностью воды, чтобы пробка не смачивалась при транспортировании.

При отборе проб в одной и той же точке для различных целей, первыми отбирают пробы для бактериологических исследований.

Отобранную пробу маркируют и сопровождают актом отбора проб воды с указанием места, даты, времени забора и другой информации.

К исследованию проб в лаборатории необходимо приступить как можно быстрее с момента отбора.

Доставка проб осуществляется в контейнерах — холодильниках при температуре +4 — +10 град. C. В холодный период года контейнеры должны быть снабжены термоизолирующими прокладками, обеспечивающими предохранение проб от промерзания. При соблюдении указанных условий срок начала исследований от момента отбора проб не должен превышать 6 часов.

Если пробы нельзя охладить, их анализ следует провести в течение 2-х часов после забора.

Если не может быть соблюдено время доставки пробы и температура хранения, анализ пробы проводить не следует.

Пробы питьевой воды должны доставляться в отдельных продезинфицированных контейнерах.

Термостат, способный поддерживать рабочую температуру 37 град. C и обеспечивать градиент температуры в камере +/- 1 град. C

Термостат, способный поддерживать рабочую температуру 44 град. C и обеспечивать градиент температуры в камере +/- 1 град. C

Термостат или водяная баня, способные поддерживать рабочую температуру в камере 44 град. C с градиентом температуры в камере +/- 0,5 град. C

Водяная баня, обеспечивающая поддержание рабочего температурного режима 75 град. C с градиентом температуры +/- 5 град. C

Читайте также:  Практическая работа химии анализ почвы воды

Водяная баня или термостат, способные поддерживать температуру 45 — 50 град. C (для питательных сред)

Прибор для мембранной фильтрации под вакуумом с диаметром фильтрующей поверхности 35 или 47 мм; вакуумный насос для создания разрежения 0,5 — 1,0 атм.; прибор вакуумного фильтрования ПВФ-35 и вакуумный насос СП-4-044 отечественного производства

Весы лабораторные общего назначения 4-го класса точности, наибольший предел взвешивания 200 г, допускается погрешность не более 0,02 г

Весы лабораторные общего назначения 4-го класса точности, наибольший предел взвешивания 1 кг, допускается погрешность не более 0,1 г

РН-метр, обеспечивающий измерение с погрешностью до 0,01

Дистиллятор, обеспечивающий качество дистиллированной воды не ниже ГОСТа 6709-72

Шкаф сушильный, стерилизационный, обеспечивающий температуру +180 град. C

Стерилизатор паровой с режимами стерилизации от температуры +100 град. C (текучим паром) до +126 град. C (под давлением)

Вытяжной шкаф для работы с хлороформом при проведении анализа на колифаги

Магнитные мешалки с подогревом до 300 град. C для варки сред, либо другой нагревательный прибор

Дозаторы для разлива питательных сред

Дозаторы пипеточные для использования в анализе

Примечание. К применению допускается только измерительное оборудование, вошедшее в Государственный реестр.

Мембранные фильтры нитрат или ацетат целлюлозные для микробиологических целей с диаметром пор 0,45 мкм и размером 35 или 47 мм: отечественные фильтрующие мембраны Владипор МФАС-ОС-1, МФАС-ОС-2, МФА-МА (номер 4 — 6); или аналогичные мембраны зарубежного производства, имеющие международный сертификат качества ISO 9000 или EN 29 000

Горелки газовые или спиртовки

Индикаторы бумажные для определения pH в диапазоне 6 — 8 с интервалом определения 0,2

Пинцеты для работы с мембранными фильтрами

Фольга алюминиевая, колпачки силиконовые, металлические

Лабораторная посуда стеклянная либо одноразового использования (колбы, цилиндры, пипетки, флаконы, стаканы, чашки Петри, пробирки, стеклянные палочки, поплавки, емкости для отбора проб)

Пробки различных размеров: силиконовые, резиновые и другие, выдерживающие стерилизацию сухим жаром или автоклавированием

Карандаши или фломастеры по стеклу

Марля медицинская в кусках или бинты

Все химические реактивы должны соответствовать квалификации не ниже ч.д.а.

Вещества обладают канцерогенным и мутагенным действием, работать с соблюдением мер предосторожности.

Допускаются к использованию коммерческие питательные среды, диагностические препараты и системы идентификации производства зарубежных фирм, предназначенные для целей описываемых методов. Питательные среды и биологические препараты зарубежного производства должны иметь международный сертификат качества ISO 9000 или EN 29 000.

При использовании следует руководствоваться рекомендациями фирмы — производителя.

Все обезвоженные коммерческие питательные среды и препараты отечественного производства должны иметь сертификат соответствия, паспорт и инструкцию по применению.

Pseudomonas aeruginosa или Pseudomonas fluorescens

Контрольные штаммы получают в Российском государственном институте медицинских и биологических препаратов им. Л.А. Тарасевича или областном Центре госсанэпиднадзора.

Предпочтительно использование стандартизованных сухих питательных сред промышленного производства.

При использовании промышленных сухих питательных сред их приготавливают в соответствии с указаниями изготовителя на этикетке. В этом случае следует соблюдать способ применения и срок хранения питательных сред, указанных на упаковках.

Сухие питательные среды хранят в сухих помещениях, в темноте, при комнатной температуре. Открытые упаковки тщательно закупоривают. Среды с измененным внешним видом (уплотненные, с комками), а также с истекшим сроком годности не используют.

Для приготовления растворов, реактивов и питательных сред применяют воду дистиллированную по ГОСТу 6709-72.

Питательные среды приготовляют в посуде из инертного материала.

Учитывая возможное изменение pH питательных сред после кипячения и стерилизации при приготовлении сред устанавливают pH на 0,2 — 0,3 выше заданного, что определяют опытным путем для каждой среды. Окончательный контроль pH проводят в готовой среде при температуре 25 град. C с использованием pH-метра (жидкие среды) или бумажных индикаторов (агаризованные среды).

После стерилизации питательные среды оставляют для охлаждения при комнатной температуре.

Температура сред, хранящихся в холодильнике, перед посевом должна быть доведена до комнатной.

При необходимости разлить готовую питательную среду в чашки Петри, ее следует охладить до температуры 50 — 60 град. C.

Готовые полужидкие питательные среды хранят при комнатной температуре.

Готовят из заменителей мяса (мясного экстракта, рыбного гидролизата или других) по способу, указанному на этикетке.

Для приготовления десятикратного питательного бульона количество пептона и хлористого натрия (п. 5.3.1) или сухого препарата (п. 5.3.2) увеличивают в 10 раз.

Готовят из сухого препарата по способу, указанному на этикетке.

2% МПА готовят, увеличивая концентрацию агара до 20 г на тот же объем МПБ.

Готовят по п. 5.4.2, заменяя мясо — пептонный бульон на питательный бульон из заменителей мяса.

2-процентный питательный агар готовят, увеличивая навеску сухого препарата на 1/4 от прописи.

Готовят из сухого препарата по способу, указанному на этикетке.

Для повышения дифференцирующих свойств среды в готовую и охлажденную до 60 — 70 град. C среду перед разливкой в чашки допускается прибавлять на 100 мл среды 0,2 мл 5-процентного спиртового раствора основного фуксина.

Если на поверхности среды заметны следы влаги, чашки перед посевом необходимо подсушить. Срок хранения чашек со средой не более 2 — 3 суток в темноте, раствора фуксина — не более 1-го месяца.

При исследовании питьевой обеззараженной воды с преобладанием микрофлоры, не относящейся к бактериям кишечной группы, помимо фуксина, допускается добавление на 100 мл среды Эндо 0,2 мл 5-процентного спиртового раствора розоловой кислоты. Срок хранения розоловой кислоты — не более 1-го месяца.

Для приготовления концентрированной лактозо — пептонной (глюкозо — пептонной) среды все ингредиенты, кроме воды, увеличивают в 10 раз, разливают по 1 мл в пробирки и по 10 мл во флаконы.

5.7. Питательные среды для подтверждения способности ферментировать лактозу или маннит (глюкозу) до кислоты и газа

Глюкозу используют при отсутствии маннита.

Готовят из сухого препарата по способу, указанному на этикетке. Срок хранения — не более 2-х недель.

Готовят при отсутствии сухого препарата.

Правильно приготовленная среда — зеленого цвета с синеватым оттенком (цвет бутылочного стекла). Посев производят уколом до дна пробирки. При образовании кислоты цвет среды изменяется в желтый, при газообразовании газ скапливается или по уколу, или на поверхности, или в толще среды появляются разрывы. При инкубации посевов более 5 часов газ может улетучиться. В таких случаях на присутствие газа указывают оставшиеся в толще среды «карманы» — потемнения среды на месте бывшего пузырька газа.

При использовании в качестве подтверждающей следует добавить 2 мл 1,6-процентного неспиртового раствора индикатора бромтимолового синего на 1000 мл среды.

Разливают по 4 — 5 мл в пробирки с поплавками или комочками ваты.

Готовят по прописи завода — изготовителя.

1 вариант — 1-процентный водный раствор тетраметил-п — фенилендиамина гидрохлорида.

2 вариант — 1-процентный реактив — 1-процентный спиртовой раствор а-нафтола, 2 реактив — 1-процентный водный раствор фенилендиаминового соединения.

Растворы сохраняют в темных флаконах с притертыми пробками: 1-ый — до одного месяца, 2-ой — до одной недели. Перед употреблением (при работе со 2 вариантом) к трем частям первого раствора добавляют семь частей второго раствора.

Вместо реактива можно использовать системы индикаторные бумажные (СИБ-оксидаза) или бумажки, приготовленные заранее.

Приготовление бумажек для оксидазного теста: 30 мг а-нафтола растворить в 2,5 мл 96-процентного этилового спирта, добавить 7,5 мл дистиллированной воды и затем 50 мг диэтиланилинсульфата. Смочить фильтровальную бумажку, высушить и хранить в темноте в черной бумаге не более 6 месяцев.

С каждой новой партией реактивов, а также периодически в процессе хранения реактивов или готовой бумажной системы следует проводить контрольные испытания с тест — культурами известных микроорганизмов, дающих положительную реакцию (Pseudomonas aeruginosa или Pseudomonas fluorescens) и отрицательную реакцию (E. coli).

Основная среда. В 1000 мл стерильного расплавленного питательного агара (по п. 5.4) добавляют 10 г глюкозы, нагревают до растворения, разливают мерно во флаконы, автоклавируют при (112 +/- 2) град. C 12 минут.

Лабораторная посуда должна быть тщательно вымыта, ополоснута дистиллированной водой до полного удаления моющих средств и других посторонних примесей и высушена.

Пробирки, колбы, бутылки, флаконы должны быть заткнуты силиконовыми или ватно — марлевыми пробками и упакованы так, чтобы исключить загрязнения после стерилизации в процессе работы и хранения. Колпачки могут быть металлические, силиконовые, из фольги или плотной бумаги.

Флаконы для отбора проб закрывают силиконовыми, резиновыми и другими пробками, исключая ватно — марлевые, а также колпачками, изготовленными из фольги, плотной бумаги и др.

Новые резиновые пробки кипятят в 2-процентном растворе натрия двууглекислого 30 мин. и 5 раз промывают водопроводной водой (кипячение и промывание повторяют дважды). Затем пробки кипятят в дистиллированной воде 30 мин., высушивают, заворачивают в бумагу или фольгу и стерилизуют в паровом стерилизаторе. Резиновые пробки, использованные ранее, обеззараживают, кипятят 30 минут в водопроводной воде с нейтральным моющим средством, промывают в водопроводной воде, высушивают, монтируют и стерилизуют.

При приготовлении емкостей для отбора проб с притертой пробкой между стенкой горлышка и пробкой следует вложить полоску тонкой бумаги.

Пипетки со вставленными тампонами из ваты должны быть уложены в металлические пеналы или завернуты в бумагу.

Чашки бактериологические в закрытом состоянии должны быть уложены в металлические пеналы или завернуты в бумагу. Бумага, используемая для обертывания лабораторной посуды, не должна разрушаться при стерилизации.

Подготовленную посуду стерилизуют в сушильном шкафу при 160 — 170 град. C 1 час, считая с момента достижения указанной температуры. Простерилизованную посуду можно вынимать из сушильного шкафа только после его охлаждения ниже 60 град. C.

После охлаждения удаляют остатки сред, затем чашки и пробирки замачивают, кипятят в водопроводной воде и моют с последующим ополаскиванием дистиллированной водой.

Прежде чем приступить к посеву пробу необходимо тщательно перемешать и обработать горящим тампоном край емкости с тем, чтобы устранить его возможное загрязнение во время транспортирования. На используемых для посева пробирках и чашках необходимо обозначить номер пробы, объем воды или разбавление, дату посева.

Перед каждым отбором новой порции воды для анализа пробу необходимо перемешать стерильной пипеткой.

Мембранные фильтры должны быть подготовлены к анализу в соответствии с указаниями завода — изготовителя.

Фильтровальный аппарат обтирают ватным тампоном, смоченным спиртом ректификованным, и фламбируют. После охлаждения на нижнюю часть фильтровального аппарата (столик) кладут фламбированным пинцетом стерильный мембранный фильтр, прижимают его верхней частью прибора (стаканом, воронкой) и закрепляют устройством, предусмотренным конструкцией прибора.

В верхнюю часть прибора для фильтрования наливают точно отмеренный объем воды, затем создают вакуум в нижней части прибора.

При посеве нескольких объемов одной пробы следует фильтровать через один фильтровальный аппарат сначала меньшие, а затем большие объемы воды, меняя каждый раз фильтры.

При фильтровании 1 мл исследуемой воды или ее разбавления следует в воронку налить предварительно не менее 10 мл стерильной водопроводной воды, а затем внести анализируемую воду.

После окончания фильтрования воронку снимают, фильтр осторожно приподнимают за край фламбированным пинцетом при сохранении вакуума для удаления излишка воды на нижней стороне фильтра, а затем переносят его, не переворачивая, на питательную среду, разлитую в чашки Петри, избегая пузырьков воздуха между средой и фильтром. Поверхность фильтра с оседавшими на ней бактериями должна быть обращена вверх. Вакуум отключают до внесения следующей порции анализируемой воды.

Под каждым фильтром на дне чашки делают надпись с указанием объема профильтрованной воды, даты посева и номера пробы. На одну чашку можно поместить 3 — 4 фильтра с условием, чтобы фильтры не соприкасались.

Если исследуемая вода содержит большое количество взвешенных веществ, то ее фильтруют сначала через предварительный мембранный фильтр для удаления крупной взвеси, который помещают в фильтровальный прибор, накладывая на фильтр для бактериологического анализа. После окончания фильтрования фильтры переносят на плотную питательную среду раздельно и при выведении результатов анализа учитывают колонии, выросшие на обоих фильтрах.

Метод определяет в питьевой воде общее число мезофильных аэробных и факультативно анаэробных микроорганизмов (ОМЧ), способных образовывать колонии на питательном агаре при температуре 37 град. C в течение 24 часов, видимые с увеличением в 2 раза.

Из каждой пробы должен быть сделан посев не менее двух объемов по 1 мл.

После тщательного перемешивания пробы воды вносят по 1 мл в стерильные чашки Петри, слегка приоткрывая крышки. Сразу же после внесения воды в каждую чашку вливают 6 — 8 мл (на чашку диаметром 90 — 100 мм) расплавленного и остуженного до 45 — 46 град. C питательного агара после фламбирования края посуды, в которой он содержится. Затем быстро смешивают содержимое чашек, равномерно распределяя по всему дну, избегая образования пузырьков воздуха, попадания агара на края и крышку чашки. Эту процедуру производят на горизонтальной поверхности, где чашки оставляют до застывания агара.

Расплавленный агар на период проведения анализа помещают в водяную баню или термостат, поддерживающие температуру 45 — 46 град. C.

Тонкий слой агара увеличивает эффективность учета сапрофитной микрофлоры за счет лучших условий для роста аэробных бактерий, преобладающих в воде. Колонии вырастают более крупными, легко подсчитываемыми на фоне прозрачного тонкого слоя агара. Ограничен рост расплывчатых колоний.

После застывания агара чашки с посевами помещают в термостат вверх дном и инкубируют при температуре (37 +/- 1) град. C в течение 24 +/- 2 часов.

Должны быть подсчитаны все выросшие на чашке колонии, наблюдаемые при увеличении в 2 раза. Подсчет следует производить только на тех чашках, на которых выросло не более 300 изолированных колоний.

Подсчитанное количество колоний на каждой чашке суммируют и делят на два. Результат выражают числом колоний образующих единиц (КОЕ) в 1 мл исследуемой пробы воды и заносят в протокол.

Результат дают на основании подсчета колоний на одной чашке, если на другой подсчет невозможен.

Если на всех чашках имеет место рост расплывчатых колоний, не распространяющийся на всю поверхность чашки, или выросло более 300 колоний и анализ нельзя повторить, подсчитывают сектор чашки с последующим пересчетом на всю поверхность. В этих случаях в протоколе отмечают «число КОЕ в 1 мл — ориентировочно».

Если подсчет колоний на чашках невозможен, то в протоколе отмечают: «сливной рост».

На качество результата метода влияет соблюдение деталей техники анализа (срока хранения пробы, температуры и времени инкубации посевов, правил учета результатов, качество питательного агара).

К общим колиформным бактериям относятся грамотрицательные не образующие спор палочки, не обладающие оксидазной активностью, ферментирующие лактозу или маннит с образованием альдегида, кислоты и газа при температуре 37 град. C в течение 24-х часов.

Термотолерантные колиформные бактерии обладают всеми признаками общих колиформных бактерий, которые кроме того способны ферментировать лактозу до кислоты и газа при температуре 44 град. C в течение 24-х часов.

Метод основан на фильтрации установленного объема воды через мембранные фильтры, выращивании посевов на селективной питательной среде с лактозой и последующей идентификации колоний по культуральным и биохимическим свойствам.

При исследовании воды на выходе с водопроводных сооружений и в распределительной сети необходимо анализировать 3 объема по 100 мл.

Если анализируемая вода стабильно соответствует нормативам, то допустима фильтрация 300 мл воды через один фильтр.

При необходимости возможно увеличение количества фильтруемых объемов для получения изолированных колоний на фильтре (например, из водопроводной сети можно фильтровать 10, 40, 100, 150 мл воды).

Необходимый точно отмеренный объем воды фильтруют через мембранные фильтры с соблюдением требований, изложенных в п. 7.

Фильтры помещают на среду Эндо, приготовленную по п. 5.5.1 или п. 5.5.2. Чашки с фильтрами ставят в термостат дном вверх и инкубируют посевы при температуре (37 +/- 1) град. C в течение 24 +/- 2 часов.

Результат считается отрицательным, если на фильтрах вообще не выросли колонии или выросли колонии с неровными краями и поверхностью (пленчатые, губчатые, плесневые, прозрачные, слизистые).

При сливном росте на всех фильтрах проводят рассев на среде Эндо для получения изолированных колоний обычными бактериологическими методами.

При наличии типичных лактозоположительных колоний, дающих отпечаток на обратной стороне мембранного фильтра и среде — темно — красных, красных с металлическим блеском и без него, выпуклых с красным центром и других оттенков, а также лактозоотрицательных — розовых без отпечатков, подсчитывают число колоний каждого типа.

Для идентификации отбирают не менее 5 колоний каждого вида, делают их посев на скошенный питательный агар, либо на чашки секторами, инкубируют при температуре (37 +/- 1) град. C 16 — 18 часов. При росте колоний одного вида исследуют не менее 10 колоний.

Все дальнейшие биохимические тесты проводят только с чистыми субкультурами.

В качестве подтверждающих тестов используют оксидазный тест и тест образования кислоты и газа при ферментации лактозы или маннита (глюкозы).

Для определения оксидазной активности поместить на фильтровальную бумагу 2 — 3 капли свежеприготовленного реактива для оксидазного теста п. 5.8. Заранее приготовленные бумажки для оксидазного теста смачивают дистиллированной водой. Стеклянной палочкой или платиновой петлей (металлическая петля может дать ложно положительную реакцию) помещают мазок свежей культуры, выращенной на питательной агаровой среде, на подготовленную фильтровальную бумагу. Реакция считается положительной, если в течение 10 — 30 секунд появляется фиолетово — коричневое (п. 5.8, вариант 1) или синее (п. 5.8, вариант 2) окрашивание. Более позднюю реакцию не учитывают.

При посеве секторами оксидазный тест допустимо выполнить накапливанием реактива на часть сектора.

В тех случаях, когда на фильтрах выросло более 10 колоний, допустимо оксидазный тест выполнить, помещая мембранный фильтр на кружок фильтровальной бумаги, обильно смоченный реактивом. После проявления положительной реакции, но не позднее 5 мин., фильтр переносят обратно на среду Эндо и при необходимости дальнейшей идентификации немедленно делают пересев на подтверждающую среду.

Культуры, давшие оксидазоположительные реакции, дальнейшему исследованию не подлежат.

Все типичные лактозоположительные колонии засевают параллельно в две пробирки с одной из лактозных сред, приготовленных по п. 5.7. Для определения общих колиформных бактерий посев инкубируют при температуре (37 +/- 1) град. C в течение 24 +/- 2 часов. Для определения термотолерантных бактерий посев производят в среду, предварительно прогретую до температуры 44 град. C, и инкубируют при температуре (44 +/- 0,5) град. C в течение 24 +/- 2 часов.

Читайте также:  Правила проведения бактериологический анализ воды

Нетипичные колонии (лактозоотрицательные) пересевают в подтверждающем тесте со средой с маннитом (глюкозой) по п. 5.7 и инкубируют посевы при температуре (37 +/- 1) град. C в течение 24 +/- 2 часов.

Для ускорения анализа допустимо производить посев в подтверждающие среды с лактозой или маннитом непосредственно из колоний на фильтрах параллельно с посевом на скошенный агар (при росте крупных изолированных колоний).

Первичный учет газообразования на подтверждающих средах осуществляют через 5 — 6 часов. При отсутствии кислоты и газа или при наличии только кислоты пробирки оставляют для окончательного учета через 24 часа.

При необходимости, если отсутствует газообразование в пробирках с лактозой, допустимо, для подтверждения принадлежности колоний к общим колиформным бактериям, сделать пересев в среду с маннитом (глюкозой), инкубируя посевы при температуре (37 +/- 1) град. C в течение 24 +/- 2 часов.

Колонии учитывают как общие колиформные бактерии при отрицательном оксидазном тесте, ферментации лактозы или маннита (глюкозы) при температуре (37 +/- 1) град. C с образованием кислоты и газа.

Среди этих колоний учитывают как термотолерантные колиформные бактерии при отрицательном оксидазном тесте и ферментации лактозы при температуре (44 +/- 0,5) град. C с образованием кислоты и газа.

Если при выборочной проверке колоний одного типа получены неодинаковые результаты, то для вычисления числа колиформных бактерий среди этих колоний используют формулу:

X — число колоний одного типа;

a — общее число колоний этого типа;

b — число проверенных из них;

c — число колоний с положительным результатом.

Результат анализа выражают числом колоний образующих единиц (КОЕ) общих колиформных бактерий в 100 мл воды.

Для подсчета результата суммируют число колоний, подтвержденных как общие колиформные бактерии, выросших на всех фильтрах, и делят на 3.

При получении изолированных колоний после рассева заросших фильтров и подтверждения их как общие колиформные бактерии результат является качественным, в протоколе отмечают «обнаружено». При необходимости получения количественного результата анализ следует повторить.

В случаях сплошного роста на всех фильтрах и невозможности получения изолированных колоний результат не учитывается. В протоколе отмечают «зарост фильтров».

1. При посеве 3-х фильтров по 100 мл выросло две колонии на 100 мл, на остальных 2-х фильтрах нет роста. Число общих колиформных бактерий будет

2. При посеве 10, 40, 100 и 150 мл на фильтрах с профильтрованным объемом 40 мл выросли 4 изолированные колонии, с профильтрованным объемом 100 — 3 колонии общих колиформных бактерий. Фильтры с объемами 10 мл и 150 мл заросли и учету не подлежат. Суммируют общее число изолированных колоний и пересчитывают на объем 100 мл. В данном случае суммарное число изолированных колоний равно 7 (3 + 4 = 7) в объеме 140 мл (100 + 40). Число КОЕ будет составлять (7 x 100) : 140 = 5 КОЕ в 100 мл.

При отсутствии общих колиформных бактерий на всех фильтрах результат записывают как «не обнаружено КОЕ в 100 мл».

Вычисление и оформление результатов в протоколе определения термотолерантных колиформных бактерий проводят аналогично.

К общим колиформным бактериям относятся грамотрицательные не образующие спор палочки, не обладающие оксидазной активностью, ферментирующие лактозу или маннит с образованием альдегида, кислоты и газа при температуре 37 град. C в течение 24 — 48 часов.

Определение понятия термотолерантных колиформных бактерий по п. 8.2.1.

Титрационный метод может быть использован:

— при отсутствии материалов и оборудования, необходимых для выполнения анализа методом мембранной фильтрации;

— при анализе воды с большим содержанием взвешенных веществ;

— в случае преобладания в воде посторонней микрофлоры, препятствующей получению на фильтрах изолированных колоний общих колиформных бактерий.

Метод основан на накоплении бактерий после посева установленного объема воды в жидкую питательную среду, с последующим пересевом на селективную плотную питательную среду с лактозой и идентификации колоний по культуральным и биохимическим тестам.

При исследовании питьевой воды централизованного водоснабжения засевают 3 объема по 100 мл (анализ качественный). При исследованиях воды с целью количественного определения общих колиформных бактерий и при повторном анализе производят посев: 3 объемов по 100 мл, 3 объемов по 10 мл, 3 объемов по 1 мл. Каждый объем исследуемой воды засевают в лактозо — пептонную среду, приготовленную по п. 5.6. Посев 100 мл и 10 мл воды производят в 10 и 1 мл концентрированной лактозо — пептонной среды, посев 1 мл пробы проводят в 10 мл среды обычной концентрации.

Посевы инкубируют при температуре (37 +/- 1) град. C в течение 24 — 48 часов. После 24 часов инкубации проводят предварительную оценку посевов. Из емкостей, где отмечено наличие роста и образование газа, производят высев на сектора среды Эндо, приготовленной с добавлением фуксина (п. 5.5.1). Посев делают петлей с таким расчетом, чтобы получить изолированные колонии.

Засеянные емкости без наличия роста и образования газа оставляют при (37 +/- 1) град. C до 48 часов. После 48 часов инкубации посевы без признаков роста считают отрицательными и дальнейшему исследованию не подлежат. Из емкостей, где отмечено помутнение и образование газа или только помутнение, делают высев на сектора среды Эндо.

Посевы на среде Эндо инкубируют при температуре (37 +/- 1) град. C в течение 18 — 20 часов.

Допустимо в качестве среды накопления использовать глюкозо — пептонную среду вместо лактозо — пептонной. В этом случае высев на сектора среды Эндо производят через 24 часа инкубации из посевов, где отмечено помутнение и газообразование или только помутнение. Дальнейший анализ выполняют так же, как и при использовании лактозо — пептонной среды.

При образовании помутнения и газа в среде накопления и росте на среде Эндо типичных для лактозоположительных бактерий колоний, дающих отпечаток на среде, образующих альдегид — темно — красных или красных, с металлическим блеском или без него, выпуклых с красным центром, дают положительный ответ на присутствие общих колиформных бактерий в данном объеме пробы.

В следующих случаях требуется подтвердить наличие общих колиформных бактерий:

— если в среде накопления отмечено только помутнение (подтверждают на среде с маннитом (глюкозой));

— когда принадлежность к лактозоположительным колониям вызывает сомнение у исследователя, подтверждают на среде с лактозой.

При этом проверяют наличие отпечатка на среде Эндо после снятия петлей подозрительной колонии. Среда под лактозоположительной колонией окрашена в красный цвет. Выполняют оксидазный тест на чистой агаровой субкультуре, как это описано в п. 8.2.4, после посева этих колоний на скошенный агар или сектор чашки с питательным агаром. Подтверждают способность к газообразованию при посеве изолированных 1 — 2-х колоний с сектора на среду с лактозой или маннитом (глюкозой) по п. 5.7 (в зависимости от цели исследования) с последующей инкубацией посевов при температуре (37 +/- 1) град. C в течение 24-х часов.

Если на секторе получено наслоение культур, то необходимо произвести рассев подозрительных на типичные колонии общепринятыми бактериологическими методами.

Дальнейшему исследованию подлежат также сектора среды Эндо, где выросли лактозоотрицательные розовые колонии. Для идентификации выполняют оксидазный тест путем накапывания реактива на часть колоний, выросших на секторе. После обнаружения оксидазоотрицательных колоний, 2 — 3 из них каждого типа и с каждого сектора пересевают на подтверждающие среды с маннитом (глюкозой) по п. 5.7 и инкубируют при температуре (37 +/- 1) град. C в течение 24-х часов.

Первичный учет газообразования осуществляют через 5 — 6 часов. При отсутствии кислоты и газа или при наличии только кислоты пробирки оставляют для окончательного учета через 24 часа. Положительный ответ на наличие общих колиформных бактерий дают при ферментации лактозы или маннита (глюкозы) до кислоты и газа хотя бы одной колонией с сектора.

Отрицательный ответ дают, если:

— в среде накопления нет признаков роста;

— на секторах среды Эндо нет роста;

— на секторах среды Эндо выросли не характерные для колиформных бактерий колонии (прозрачные, с неровными краями, расплывчатые и т.п.);

— все колонии на секторе оказались оксидазоположительными;

— если в подтверждающем тесте на среде с лактозой или маннитом (глюкозой) не отмечено газообразования.

Для определения термотолерантных колиформных бактерий работают с секторами среды Эндо, где выросли типичные лактозоположительные колонии и отмечено помутнение и газообразование в среде накопления. Делают посев 2 — 3 изолированных колоний каждого типа с каждого сектора в пробирки с любой из лактозных сред, приготовленных по п. 5.7.

Среда перед посевом должна быть нагрета на водяной бане или в термостате до 44 град. C. Немедленно после посева пробирки помещают в термостат и инкубируют при температуре (44 +/- 0,5) град. C в течение 24 +/- 2 часов.

При образовании газа в среде накопления, росте на среде Эндо лактозоположительных бактерий, образующих альдегид, и выявлении способности этих бактерий ферментировать лактозу до кислоты и газа в течение 24-х часов при температуре 44 град. C дают положительный ответ на наличие в этом объеме пробы воды термотолерантных колиформных бактерий. Во всех остальных случаях дают отрицательный ответ.

Допустимо для ускорения выдачи ответа на присутствие термотолерантных колиформных бактерий производить высев 1 мл из объемов среды накопления, где отмечено помутнение и газообразование, в пробирки с лактозо — пептонной средой с поплавком по п. 5.7 и прогретой предварительно до температуры 44 град. C. Посевы выдерживают в термостате при температуре (44 +/- 0,5) град. C в течение 24 +/- 2 часов. При обнаружении кислоты и газа дают положительный ответ.

При исследовании 3-х объемов по 100 мл результаты оцениваются качественно, и при обнаружении общих или термотолерантных колиформных бактерий хотя бы в одном из трех объемов делают запись в протоколе «обнаружены» в 100 мл.

При исследовании количественным методом, после определения положительных и отрицательных результатов на наличие общих и термотолерантных колиформных бактерий в объемах воды, посеянных в среду накопления, вычисляют наиболее вероятное число бактерий в 100 мл пробы по табл. 1. Результат сообщают без доверительного интервала.

При отрицательном ответе на наличие общих или термотолерантных колиформных бактерий во всех исследованных объемах выдают заключение в протоколе «не обнаружены» в 100 мл.

Сульфитредуцирующие клостридии, преимущественно Closridium perfringens, — спорообразующие анаэробные палочковидные микроорганизмы, редуцирующие сульфит натрия на железо — сульфитном агаре при температуре 44 град. C в течение 24-х часов.

Метод основан на фильтрации исследуемого объема воды через мембранные фильтры, выращивании посевов в железо — сульфитном агаре в условиях, приближенных к анаэробным, и подсчете числа черных колоний.

Пробу воды 20 мл прогревают на водяной бане в пробирках при температуре (75 +/- 5) град. C в течение 15 минут для исключения вегетативных форм.

Из каждой пробы питьевой воды на выходе с водопроводных сооружений фильтруют 20 мл. При необходимости подбирают объемы с таким расчетом, чтобы на фильтрах выросло не более 10 — 15 колоний. При этом ориентируются на результаты предыдущих исследований.

Фильтрование воды производят в соответствии с требованиями, изложенными в п. 7.

Вариант 1 — определение в пробирках.

Перед посевом пробирки с железо — сульфитным агаром, приготовленным по п. 5.9, расплавляют на водяной бане (не кипятить!). В течение посева поддерживают среду нагретой до 70 — 80 град. C в водяной бане желательно с автоматическим регулированием температуры.

После фильтрации установленного объема воды мембранный фильтр фламбированным пинцетом берут за два противоположных края и согнутый в виде трубочки помещают в пробирку с горячим агаром. Сторона фильтра с осевшими бактериями обращена внутрь. При этом фильтр распрямляется и располагается по стенке пробирки.

Сразу же после посева пробирку с агаром и фильтром для создания анаэробных условий быстро охлаждают, помещая в емкость с холодной водой. Культивируют посевы при (44 +/- 1) град. C в течение 24 +/- 2 часов.

Вариант 2 — определение в чашках Петри.

Чашки Петри диаметром 55 — 60 мм заливают тонким слоем железо — сульфитного агара. После фильтрации фильтр помещают фильтрующей поверхностью вниз на застывшую питательную среду так, чтобы под фильтром не было пузырьков воздуха. Заливают расплавленным железо — сульфитным агаром до верхнего края чашки, чтобы крышка плотно прилегала к среде для создания анаэробных условий. Культивируют посевы при (44 +/- 1) град. C в течение 24 +/- 2 часов.

Недопустимо на чашку помещать более одного фильтра.

Подсчитывают черные колонии. Учету подлежат только те посевы, где получены изолированные колонии, как выросшие на фильтрах, так и в толще среды. Предварительный учет результатов проводят через 16 — 18 часов инкубации. Окончательный учет результатов осуществляют через 24 часа.

Результат анализа выражают числом колоний образующих единиц (КОЕ) спор сульфитредуцирующих клостридий в 20 мл воды.

Если не отмечен рост черных колоний на всех фильтрах, в протоколе анализа дают ответ «не обнаружено» в 20 мл воды.

При наличии колоний, после их подсчета, результат вычисляют по формуле:

X — число клостридий в 20 мл;

a — число подсчитанных колоний в сумме;

V — фактически профильтрованный объем на фильтрах, где велся учет колоний.

При невозможности учета колоний из-за сливного роста результат оценивается как качественный, в протоколе отмечают «обнаружено» в 20 мл. При необходимости получения количественного результата анализ необходимо повторить.

Определение понятия показателя по п. 8.6.1.

Метод основан на посеве установленного объема воды в пробирки с железо — сульфитным агаром, инкубации посевов при температуре 44 град. C в течение 24-х часов и подсчете черных колоний.

Железо — сульфитный агар во флаконах и пробу воды готовят, как это описано в п. 8.4.3.

Из каждой пробы делают посев 20 мл в железо — сульфитный агар, приготовленный по п. 5.9.

В стерильные пробирки вносят:

— по 10 мл в 2 пробирки при использовании пробирок, вмещающих не менее 30 мл;

— по 5 мл воды в 4 пробирки при использовании пробирок, вмещающих не менее 15 мл.

Посевы заливают горячим 75 — 80 град. C железо — сульфитным агаром в количестве, превышающем объем воды в 2 раза. Среду заливать по стенке пробирки, избегая образования пузырьков воздуха. После этого пробирку быстро охлаждают, помещая ее в емкость с холодной водой для создания анаэробных условий. Посевы инкубируют при (44 +/- 1) град. C в течение 24 +/- 2 часов.

Учет результатов выполняют по п. 8.4.4.

Подсчет и представление результатов выполняют по п. 8.4.5.

Колифаги — бактериальные вирусы, способные лизировать кишечную палочку и формировать зоны лизиса (бляшки) через 18 +/- 2 часа при температуре (37 +/- 1) град. C на ее газоне на питательном агаре. Колифаги — индикаторы очистки питьевой воды в отношении энтеровирусов.

Прямой метод выделения колифагов из воды целесообразно применять при проведении исследований по эпидпоказаниям или в случае необходимости получения быстрого результата анализа.

Принцип прямого метода определения колифагов в питьевой воде заключается в исследовании нормируемого объема воды (100 мл) путем его прямого посева и последующего учета зон лизиса (бляшек) на газоне E. coli в чашках Петри с питательным агаром. Для контроля используют чашку с чистым газоном E. coli на питательном агаре. Нижний предел определения колифагов — 1 БОЕ (бляшкообразующая единица) в 100 мл воды.

Накануне проведения анализа необходимо сделать посев E. coli на косяк с питательным агаром (п. 5.4).

Если агар застыл не полностью, чашки Петри следует инкубировать в термостате не переворачивая.

Учет результатов проводят путем подсчета и суммирования бляшек, выросших на 5-ти чашках Петри. Результаты выражают в бляшкообразующих единицах (БОЕ) на 100 мл пробы воды. В контрольной чашке бляшки колифагов должны отсутствовать.

При наличии бляшек в контрольной чашке следует получить новый штамм E. coli из бактериологической лаборатории областного центра госсанэпиднадзора и анализ повторить.

Метод предназначен для проведения текущего анализа питьевой воды.

Принцип метода определения колифагов в питьевой воде титрационным методом заключается в предварительном подращивании колифагов в среде обогащения в присутствии E. coli и последующем выявлении бляшек колифага на газоне E. coli на питательном агаре.

Определение НВЧ колифагов производят по табл. 3.

5.3. В каждую емкость внести смыв бактерий E. coli в концентрации

Сделать посев E. coli на косяк с питательным агаром (по п. 5.4) и инкубировать в термостате при температуре (37 +/- 1) град. C.

Через 18 +/- 2 часа инкубации пробы извлечь из термостата. Из колбы с 50 мл пробы воды стерильно отлить в пробирку 10 мл. Эту пробирку и остальные 5 пробирок промаркировать, в каждую добавить по 1 мл хлороформа, заменить ватно — марлевые пробки на резиновые, пробирки тщательно встряхнуть и оставить при комнатной температуре на 15 минут для осаждения хлороформа.

После этого чашку с агаром для исследуемой пробы разделить на 6 секторов, промаркировать их в соответствии с исследуемыми объемами и в каждый сектор внести по 1 капле надосадочной жидкости (без хлороформа) из каждой пробирки.

После подсыхания капель чашку с исследуемой пробой и контрольную чашку поместить в термостат при (37 +/- 1) град. C на 18 +/- 2 часа.

При одновременном анализе нескольких проб воды контролем газона E. coli может служить одна чашка.

Учет результатов проводится по наличию на секторах выросших бляшек колифага. Индекс колифага определяется по таблице НВЧ (табл. 3). На контрольной чашке бляшки колифага должны отсутствовать. При обнаружении бляшек колифага на контрольной чашке следует поступить как в п. 8.6.4.

источник