Дезинфекция стекол с анализом кала

УТВЕРЖДЕНА
Минздравом СССР
17 января 1991 года

С целью профилактики инфицирования медицинского персонала лечебно-профилактических учреждений особое значение имеет выполнение требований противоэпидемического режима.

Ответственность за организацию и соблюдение противоэпидемического режима при работе с потенциально опасным материалом возлагается на руководителя клинико-диагностической лаборатории (КДЛ).

Инструктаж среднего и младшего медицинского персонала проводится ответственным за технику безопасности не реже одного раза в квартал.

Инструкция составлена в соответствии с ГОСТом 42-21-2-85 «Стерилизация и дезинфекция изделий медицинского назначения. Методы, средства и режимы», а также приказом Минздрава СССР (1989 год) «О мерах по снижению заболеваемости вирусным гепатитом в стране».

Медицинскому персоналу КДЛ следует избегать контактов кожи и слизистых оболочек с кровью и другими биологическими жидкостями, для чего необходимо:

1. Работать в медицинских халатах, шапочках, сменной обуви, а при угрозе забрызгивания кровью или другими биологическими жидкостями — в масках, очках, клеенчатом фартуке.

2. Работать с исследуемым материалом в резиновых перчатках, все повреждения кожи на руках должны быть закрыты лейкопластырем или напальчником. Избегать уколов и порезов.

3. Проводить разборку, мойку, прополаскивание лабораторного инструментария, посуды после предварительной дезинфекции в резиновых перчатках.

4. В случае загрязнения кожных покровов кровью или другими биологическими жидкостями следует немедленно обработать их в течение 2 мин тампоном, обильно смоченным 70% спиртом, вымыть под проточной водой с мылом и вытереть индивидуальным тампоном. При загрязнении перчаток кровью их протирают тампоном, смоченным 3% раствором хлорамина, 6% раствором перекиси водорода.

При подозрении на попадание крови на слизистые оболочки их немедленно обрабатывают струей воды, 1% раствором протаргола; рот и горло прополаскивают 70% спиртом, или 1% раствором борной кислоты, или 0,05% раствором перманганата калия.

5. Запрещается есть, пить, курить и пользоваться косметикой на рабочем месте.

6. Запрещается пипетирование крови ртом; следует использовать автоматические пипетки, а при их отсутствии — резиновые груши.

7. Поверхность рабочих столов в конце каждого рабочего дня подвергается дезинфекции, а в случае загрязнения биологическим материалом — немедленно.

Взятие крови следует проводить в резиновых перчатках, соблюдая правила асептики, обрабатывая перчатки 70% спиртом перед каждым взятием. Перед проколом кожу пальца обследуемого обрабатывают стерильным тампоном (шариком из ваты), смоченным 70% спиртом.

После взятия крови к раневой поверхности прикладывают новый стерильный тампон, смоченный 70% спиртом. Извлекать скарификаторы следует только с помощью пинцета, хранящегося в растворе дезинфекционного средства.

Стерильные тампоны хранятся в упаковке из бумаги, указанной в ГОСТе 42-21-2-85, в количестве не более 20 штук. Стерильные лабораторные инструменты хранятся в той же упаковке, в которой проводилась их стерилизация. Существует несколько вариантов взятия крови для гематологического исследования.

I вариант. После прокола пальца несколько капель крови (не менее 3-4), спускают на индивидуальное предметное (часовое) стекло, перемешивают и используют для работы.

II вариант. Кровь набирают в индивидуальные стерильные, предварительно выверенные капилляры объемом 20 мкл и капилляры Панченко непосредственно с поверхности кожи проколотого индивидуальным копьем пальца пациента.

III вариант. Кровь в количестве 40 мкл набирают стерильным индивидуальным капилляром Панченко, предварительно смоченным цитратом в соотношении цитрата и крови 1: 4 по объему.

IV вариант. После прокола кожи пальца 6-8 капель крови спускают в пластиковую пробирку, в которую предварительно внесено небольшое (на кончике глазной лопаточки) количество трилона Б.

Пробирку с кровью тщательно перемешивают, вращая ее между ладонями. Разлив крови пипетками по пробиркам осуществляется в лаборатории.

Количество компонентов для приготовления 1 л моющего р-ра

При механизированной очистке (струйный метод)

Раствор перекиси водорода:

При механизированной очистке (струйный метод, использование ультразвука) и ручной очистке

Моющее средство «Прогресс», «Айна», «Астра», «Лотос», «Лотос-автомат», «Маричка», г

При механизированной очистке с использованием ультразвука

Примечание. При использовании моющего средства, содержащего 0,5% перекиси водорода и 0,5% синтетического моющего средства «Лотос» и «Лотос-автомат», применяют ингибитор коррозии — 0,14% олеат натрия (1,4 г на 1 л раствора). В скобках указано количество питьевой воды в мл.

Процесс при проведении очистки

Замачивание в моющем растворе при полном погружении изделия при применении моющего средства «Биолот»

То же при применении моющего средства «Прогресс», «Астра», «Лотос», «Лотос-автомат», «Айна», «Маричка»

Мойка каждого изделия в моющем растворе при помощи ерша и ватно-марлевого тампона

Ополаскивание проточной водой:

— при применении моющего средства «Биолот»

Ванна, раковина с устройством для струйной подачи

— при применении моющего средства «Маричка», «Прогресс»

— при применении средств «Астра», Лотос», «Айна», «Лотос-автомат»

Ополаскивание дистиллированной водой

До полного исчезновения влаги

1. Температура раствора в процессе мойки не поддерживается.

2. Моющий раствор перекиси водорода с синтетическими моющими средствами, в том числе «Лотос», «Лотос-автомат», с ингибитором коррозии можно использовать в течение суток с момента изготовления, если цвет раствора не изменился. Неизмененный раствор можно подогревать до 6 раз, в процессе подогрева концентрация перекиси водорода существенно не изменяется.

3. Раствор моющего средства «Биолот», применяемый как при ручном, так и при механическом способе, используется однократно, так как при повторном использовании фермент, входящий в состав моющего средства, разрушается в процессе очистки.

Лабораторные инструменты, иглы, капилляры, предметные стекла, пробирки, меланжеры, счетные камеры, кюветы фотоэлектроколориметра, пипетки, наконечники, резиновые груши, баллоны и т.д., посуда после каждого использования должны подвергаться дезинфекции.

1. Использованные изделия промывают в емкости с водой. Промывные воды обеззараживают кипячением в течение 30 мин или засыпают сухой хлорной известью, известью белильной термостойкой, нейтральным гипохлоритом кальция (НГК) в соотношении 200 г на 1 л, перемешивают и обеззараживают в течение 60 мин. Промытые изделия кипятят в закрытой емкости в воде в течение 30 мин или в 2% растворе соды в течение 15 мин. (В случае кипячения изделий в 2% растворе соды дальнейшая предстерилизационная очистка не проводится.)

2. Лабораторные инструменты могут быть обеззаражены погружением в раствор с дезинфицирующим раствором.

В качестве дезинфицирующих используются следующие растворы: 3% раствор хлорамин, 6% перекись водорода, 6% перекись водорода с 0,5% моющего средства («Прогресс», «Астра». «Айна», «Лотос», «Лотос-автомат»), 4% формалин, 0,5% НГК, 0,5% сульфохлорантин; время обеззараживания 60 мин.

Дезинфицирующие растворы используются однократно.

Емкости для проведения дезинфекции должны быть четко маркированы, иметь крышки.

При дезинфекции изделий, имеющих внутренние каналы, растворы дезинфекционного средства в объеме 5-10 мл пропускают через канал с помощью груши для удаления остатков крови, сыворотки и пр., после чего изделия полностью погружают в дезинфицирующий раствор во вторую емкость.

При погружении инструментов в горизонтальном положении полости каждого инструмента должны быть заполнены дезинфицирующим раствором.

3. Каждая партия сухих хлорсодержащих дезинфектантов перед использованием должна подвергаться контролю на содержание активного хлора.

4. Посуду, соприкасающуюся с кровью или сывороткой и не предназначенную для последующего контакта с обследуемым, после дезинфекции промывают проточной водой для полного удаления дезинфектанта и проводят необходимую технологическую обработку.

5. Блоки кювет анализатора ФП, кюветы измерительной аппаратуры, пластиковые пробирки и т.д. обеззараживают только 6% раствором перекиси водорода и промывают проточной водой.

6. С предметных стекол с фиксированным и окрашенным мазком крови после проведения микроскопии удаляют остатки иммерсионного масла, стекла кипятят в мыльном растворе не менее 15 мин до полного отхождения краски, затем промывают проточной водой, подсушивают на воздухе и протирают.

7. Остатки крови, мочи, спинномозговой жидкости и т.д., пробы, содержащие разведенную сыворотку без добавления кислот, щелочей сливают в специальную тару и обеззараживают сухой хлорной известью, известью белильной термостойкой, НГК в соотношении 1:5 в течение 1 часа. При удалении сгустков следует предварительно отделить материал металлическим шпателем, который затем обеззараживают. Посуду из-под мочи, кала обрабатывают по описанной выше методике, но ее можно не подвергать стерилизации.

8. При загрязнении кровью или секретами мебели, инвентаря, приборов их следует немедленно дважды протереть ветошью, ватными или марлевыми тампонами, обильно смоченными дезинфицирующими растворами.

Использованную ветошь сбрасывают в специально выделенную емкость с дезинфицирующим раствором, маркированную «Для дезинфекции использованной ветоши».

9. При загрязнении кровью или секретами спецодежды ее снимают, предварительно обработав дезинфицирующим раствором участок загрязнения.

Стирка спецодежды на дому категорически запрещается. Смена спецодежды должна осуществляться не менее 2 раз в неделю.

10. Перчатки после окончания работы обеззараживают погружением в 3% раствор хлорамина или 6% раствор перекиси водорода на 1 час или кипячением в течение 30 мин.

11. Одноразовый инструментарий (плашки, наконечники, автоматические пипетки и т.д.) обеззараживают и утилизируют в паровом стерилизаторе при 2,0 кг/2 (132° С) в течение 60 мин.

После дезинфекции лабораторный инструментарий, соприкасающийся с раневой поверхностью или слизистыми оболочками обследуемого, подлежит обязательной предстерилизационной очистке и стерилизации.

Предстерилизационную очистку проводят с применением моющих растворов (табл.1 и 2).

Количество предстерилизационной очистки изделий оценивают на наличие крови путем постановки бензидиновой или амидопириновой пробы, на наличие остаточных количеств щелочных компонентов моющего вещества — путем фенолфталеиновой пробы.

Самоконтроль в КДЛ проводят ежедневно, контролю подвергают не менее 1% от одновременно обработанных изделий одного наименования, но не менее 3-5 единиц.

При положительной пробе на кровь или моющее средство всю группу контролируемых изделий подвергают повторной обработке до получения отрицательных результатов.

После дезинфекции и предстерилизационной очистки проводят стерилизацию игл, шприцев, пробирок, пипеток, стеклянных палочек, стекол, меланжеров и т.д.

источник

5.1. Банки с фекалиями, желчью, мокротой и т.п. помещают в эмалированные кюветы или на отдельные столы стационарные или передвижные (с пластиковым или другим легко поддающимся дезинфекции покрытием).

5.2. Пробирки с кровью устанавливают в штативы, помещенные в эмалированные, пластиковые кюветы.

5.3. При отсутствии пластикового покрытия на столах для микроскопии используют легко поддающиеся дезинфекции стеклянные, металлические, пластиковые пластины или эмалированные кюветы, где раскладывают мазки, препараты, материал для исследования.

5.4. Отработанные предметные стекла, пипетки, пробирки, пробки, стеклянные палочки, химические стаканчики и т.п. складывают в течение рабочего дня в емкости с дезинфицирующим раствором до полного вертикального погружения (10%-ный хлорамин, «Велтолен», «Аламинаг», дезсредства типа «Септодор», «Дианокс», «Виркон» и т.д., допущенные к применению в установленном порядке) для предварительного обеззараживания.

5.5. Заключительное обеззараживание лабораторной посуды проводится путем кипячения в воде (с момента закипания не менее 30 минут) с добавлением хозяйственного мыла или жидкого моющего средства. При соответствующих условиях можно использовать автоклавирование. После дезинфекции посуда допускается для мытья и стерилизации.

5.6. Ватно-марлевый материал, бумажные фильтры и разовые деревянные палочки уничтожаются путем сжигания или выброса в контейнер для мусора после экспозиции в одном из дезинфицирующих растворов или предварительно засыпаются сухим порошком хлорной извести или хлорамина.

5.7. Пробы фекалий, мокроты, желчи, мочи засыпаются сухой хлорной известью или белильной термостойкой известью или хлорамином перед выбросом в контейнеры или сливом в общую канализационную систему (при соответствующих условиях для обезвреживания используют автоклавирование).

5.8. Полистироловые планшеты, наконечники, микропробирки, пробирки, пипетки и др., используемые при работе с кровью или сывороткой крови, обеззараживаются в 6%-ном растворе перекиси водорода с экспозицией 3 часа в термостате при 50 0 С. После этого промывают под проточной водой, затем промывают 3-5 минут в дистиллированной воде и высушивают в термостате при 50 0 С в течение 15 минут.

5.9. Сгустки крови и сыворотку крови перед утилизацией в общую канализационную сеть обезвреживают только с применением дезинфицирующих растворов (в соответствии с действующими инструкциями по обеззараживанию).

5.10. Рабочие поверхности лабораторных столов обеззараживают 70%-ным спиртом с последующим фламбированием.

5.11. Дезинфекционная обработка оборудования (центрифуги, микроскопы, холодильники и др.) проводится раствором 70%-ного спирта или с применением соответствующих дезсредств.

5.12. Дезинфекция халатов и полотенец проводится методом кипячения.

5.13. Текущая уборка лабораторных помещений проводится ежедневно после окончания рабочего дня влажным способом с применением дезинфицирующих средств, в «чистой» зоне – с применением моющих средств.

5.14. Для мусора используются ведра с педальным приспособлением для поднятия крышек и разовые полиэтиленовые пакеты для мусора.

5.15. Для дезинфекции воздуха лабораторного помещения и поверхностей используются бактерицидные лампы или аэрозольные дезинфицирующие вещества.

ЛИЧНАЯ ГИГИЕНА ЛАБОРАНТА

6.1. Работа с фекалиями, желчью, мокротой, кровью и другим биологическим материалом от людей проводится обязательно в резиновых перчатках, особенно в период подготовки материала и ходе его исследования.

6.2. Обработка рук после работы с инвазионным материалом заключается в предварительном мытье рук с мылом под проточной водой, затем обработка ватным тампоном с 70%-ным спиртом (можно использовать дезсредства для гигиенической и хирургической обработки рук).

6.3. При длительной микроскопии лаборанту для профилактики утомляемости глаз необходимо делать зарядку:

попеременно прикрывая рукой (руки перед этим тщательно моются) один глаз, другим смотреть вдаль – на деревья, строения, дома за окном;

прикрыть глаза, положить пальцы рук на веки и слегка надавить; затем, преодолевая сопротивление пальцев, посмотреть вверх, вниз, направо и налево (повторить 6-8 раз);

потянуться нижней губой к носу для лучшего оттока венозной крови из глаз;

очень мягко, осторожно подушечками пальцев круговыми движениями помассировать глазные яблоки через веки;

дотронуться до слезных косточек у переносицы и помассировать; переместить пальцы к наружным уголкам глаз и также помассировать;

посидеть расслабленно около минуты; сжать кулаки, напрячь плечи, руки, потянуться всем телом, отряхнуться и снова можно приступать к микроскопированию (работа с микроскопом у лаборанта не должна занимать более 60% рабочего времени за день).

5.4. Перед выходом из лабораторного помещения рабочий халат снимается; лабораторный халат и сменная обувь хранятся в шкафу отдельно от личной одежды.

ОТВЕТСТВЕННОСТЬ ЗА СОБЛЮДЕНИЕ ПРОТИВОЭПИДЕМИЧЕСКОГО РЕЖИМА В ЛАБОРАТОРИИ

7.1. Соблюдение правил дезинфекции, техники безопасности при работе с инвазионным и подозрительным на содержание возбудителей паразитарных болезней материалом обязательно для всех сотрудников лаборатории.

7.2. Текущий контроль за выполнением требований техники безопасности осуществляет руководитель лаборатории.

ОРГАНИЗАЦИЯ РАБОТЫ ПО ПАРАЗИТОЛОГИЧЕСКОМУ ОБСЛУЖИВАНИЮ НАСЕЛЕНИЯ

Начальный этап работы лаборанта по паразитологическому обследованию населения -планирование. Оно зависит от характера и назначения лаборатории ЦГЭ.

1. Планируется обследование планового контингента работников пищевых и детских учреждений, детей, животноводов и др. При этом учитывается возможность конкретных гельминтозов.

2. Обследование с целью выявления заболеваемости населения. Лечебные учреждения обследуют госпитализированных всех; поликлиники — амбулаторных больных по показаниям. За этими лабораториями закреплены школы, детские сады. Лаборатории сельских участковых больниц осуществляют все виды разных обследований.

В районах с повышенной заболеваемостью эхинококкозом и некоторыми другими болезнями планируются специальные мероприятия. При подозрении на эхинококкоз и др. обследуются клин, лаб.: по эпид. показаниям — лаборатории ЦГЭ, привлекаются работники мед. сети.

После плана составляется график обследования — основной рабочий документ

годовой, месячный — утверждается руководством учреждения, доводится до руководителей обследуемых учреждений.

Сан.просветработа — неотъемлемое звено профилактики, также планируется.

Организация работы лаборатории.

1. Сбор фекалий производится в водонепроницаемую посуду: стеклянные баночки, парафиниро­ванные стаканчики. Допускаются спичечные коробки (кроме исследования на энтеробиоз, простейщие кишечника).

2. Соблюдения сроков хранения (на гельминты сутки в холодильнике, на простейшие кишеч­ника исследуют немедленно, в других случаях консервация).

3. Лаборант обучает медперсонал больницы правильному взятию исследуемого материала и
его доставки в лабораторию.

4. В направлении должны быть указаны: ФИО и паспортные данные больного, предполагаемый диагноз, цель исследования, наименование направившего учреждения.

Нормативы работы: 6 часов в день при 6-ти дневной недели.

Проводится ежедневный учёт анализов с подсчетом дневной нагрузки, что дает возможность оценить работу лаборанта, потребность в объеме анализов, реактивах и др.

5. Каждый анализ нормируется по времени. Проводится строгий учет реактивов и оборудования.

Учет и отчетность.

Клинические лаборатории ведут журналы для учета паразите логических анализов по каждому виду записи паразитарных болезней, их регистрации.

Паразитологические лаборатории — отдельные журналы для каждого вида исследований.

Отчеты составляют за полугодие и за год по установленной форме и направляют в ЦГЭ контролирующую, организаторскую и консультативную функцию.

Для каждого заболевания вид исследований регламентируется.

Последнее изменение этой страницы: 2016-09-20; Нарушение авторского права страницы

источник

Очень часто пациенты при подготовке к сдаче анализа кала задают вопросы:

• Каким образом собрать биоматериал?
• Какое количество биоматериала достаточно для проведения исследования?
• Как длительно возможно хранение кала? Как быстро нужно доставить кал в лабораторию?

В этой статье мы постарались подробно ответить на каждый из них.

Итак, для того чтобы правильно собрать и доставить биоматериал (кал) в лабораторию необходимо учитывать следующие условия:

1. Емкость (контейнер) для сбора кала должны быть: одноразового использования, стерильный, пластиковый, с хорошо закрывающейся крышкой, желательно с встроенным шпателем/ложкой на крышке.
2. Сбор кала должен производиться сразу после естественной дефекации, использование клизмы запрещается.
3. При назначении исследований кала на фоне специальной диеты, ее характер должен быть указан при назначении анализа.
4. Рекомендуется отменить прием препаратов, влияющих на работу кишечника (слабительные, ректальные свечи), а также ферментов и препаратов, содержащих железо.
5. Детям сбор кала необходимо организовать при следующих условиях:
   • использовать горшок/судно, предварительно проведя дезинфекцию сосуда;
   • на дно горшка положить чистый лист бумаги;
   • кал собрать встроенным шпателем/ложкой на крышке в контейнер
   • недопустимо хранение кала в горшке, судне, др. сосудах, не предназначенных для сбора кала.
6. Кал не должен содержать примеси мочи, а также отделяемого женских и мужских половых органов.
7. Количество кала для лабораторного исследования 10-40г (это примерно 2 чайные ложки или 1 столовая ложка). Идеальный вариант сбора кала – утреннее время. К сожалению, на практике не всегда удается собрать биоматериал в утреннее время. Поэтому доставка биоматериала в лабораторию осуществляется в течение 2-4 часов после сбора кала, но не позднее 10-12 часов после дефекации при условии хранения в холодильнике при t +3-6 С. Исключение – бактериологические исследования кала – доставка в лабораторию должна осуществляться в течение 2-4 часов после дефекации, но не более 6 часов.
8. Гигиенический туалет наружных половых органов не требуется.

Для сбора биоматериала требуется подготовка в течение 3-5 дней на фоне специальной диеты, содержащей определенное количество белков, жиров, углеводов. Соблюдение данной диеты возможно только после консультации терапевта или педиатра.

Для сбора биоматериала необходимо исключить из рациона питания в течение 2-3 дней следующие продукты: мясо, рыбу, зеленые овощи, помидоры, препараты железа. Употребление вышеперечисленных продуктов могут дать ложноположительную реакцию.

Наиболее диагностическую значимость этот анализ имеет для детей до 1 года. Поэтому специальной подготовки не требует.

При назначении исследования необходимо заранее получить специальный контейнер в лаборатории.

Хранение биоматериала (кала) в домашних условиях не более 24 часов в холодильнике t +3-6 С. Длительное хранение биоматериала обеспечивает концентрат, находящийся в виде распыленного вещества на стенках контейнера, либо в виде раствора.

Специальной подготовки к данному анализу не требуется.

При назначении на исследования: дифференциальная ПЦР-диагностика инфекционных энтероколитов, антиген лямблий, антиген H.pylori, исследование кала на ротавирус, энтеровирус, норовирус – условия идентичные условиям при назначении исследования кала методом высокого концентрирования на фильтрах PARASEP.

Бактериологическое исследование испражнений (кишечный дисбактериоз, условно-патогенные энтеробактерии, возбудители дизентерии и сальмонеллеза)

Предварительная подготовка не требуется. Доставка биоматериала в лабораторию осуществляется в течение 2-4 часов после сбора кала, но не более 6 часов.

Исключение: биоматериал на бактериологическое исследование возбудителей дизентерии и сальмонеллеза – кал, мазок. Доставка в лабораторию кала не более 6 часов, а мазка – 72 часа (так как пробирка содержит транспортную среду с длительным сроком хранения).

Взятие мазка осуществляется только квалифицированным медицинским работником.

Взятие соскоба проводит квалифицированный медицинский работник.

Предварительная подготовка не требуется.

Исследование соскоба на гельминты проводят только в утреннее время, до дефекации. Гигиенический туалет наружных половых органов запрещается.

источник

в клинико- иммунологической лаборатории»

Цель: профилактика внутрибольничной инфекции.

Условия: после проведения гематологических и других исследований крови.

Показания: контроль за внутрибольничными инфекциями.

дезинфицирующие и моющие средства;

емкость для сбора биологического материала;

Слить содержимое банок в емкость для биоматериалов

0,1% рабочий раствор (7 таблеток жавель-солида (соликлора)

Замочить банки с полной погрузкой в емкости для дезинфекции. Плотно закрыть крышку емкости

0,1% рабочий раствор (7 таблеток жавель-солида (соликлора) на 10 л воды)

Промыть тщательно под проточной водой каждую банку

Замочить банки в моющем растворе

5гр.моющего средства+ 983 мл воды

Промыть под проточной водой каждую банку

Цель: профилактика внутрибольничной инфекции.

Условия: после проведения гематологических и других исследований крови.

Показания: контроль за внутрибольничными инфекциями.

дезинфицирующие и моющие средства;

азопирамовая и фенолфталеиновая пробы.

Слить содержимое капилляров в емкость для биоматериалов

0,1% рабочего раствора (7 таблеток жавель-солида (соликлора)

Провести в 1-ой емкости для дезинфекции механическую очистку каждого капилляра с помощью груши

(7 таблеток жавель-солида (соликлора) на 10 л воды)

Замочить капилляры во 2-ой емкости для дезинфекции. Плотно закрыть крышку емкости

0,1% рабочий раствор жавель-солида (соликлора) или 6 % Н2О2

Промыть тщательно под проточной водой каждый капилляр

замочить капилляры в моющем растворе

5гр.моющего средства+ 983 мл воды

Промыть тщательно под проточной водой каждый капилляр

Промыть дистиллированной водой каждый капилляр

Провести азопирамовую и фенолфталеиновую пробы

10 % от общего количества чистой посуды

Цель: профилактика пищевых отравлений.

Условия: после освобождения посуды от пищевых остатков.

Показания: контроль за внутрибольничными инфекциями.

моющие и дезинфицирующие средства;

1).После механического удаления остатков пищи щеткой или деревянной лопаткой мытьё посуды щеткой проводится в I мойке в воде, имеющей t 45-50 о С, с добавлением моющих средств.

При мытье посуды в емкости: растворить моющее средство в воде

из расчета 1г средства на 1 л воды (10г – 10л);

При мытье посуды под струей воды нанести небольшое количество средства на губку, смоченную водой, растереть средство по посуде, смыть загрязнения и остатки средства проточной водой до удаления образовавшейся пены.

2).Обеззараживание посуды во II мойке погружением в раствор хлорсодержащих средств (по режиму бактериальной инфекции):

— 0,015% раствор деохлора, соликлора (1 табл.на 10л воды) 60 мин,

-0,5% раствор дюльбака (50 мл +9550 л воды) 60 мин.,

-0,1% раствор лизорина (10 мл + 9990 л воды) 60 мин.,

-0,2% раствор дезосепта (20 мл +9980 мл воды) 60 мин.

При использовании Дезинфицирующего средства «Эволайн-М для мытья посуды» проводится одновременная мойка и дезинфекция столовой посуды и кухонного инвентаря при инфекциях бактериальной (исключая туберкулез) этиологии.

Посуду и кухонный инвентарь полностью погружают в 0,5-1% рабочий раствор средства (50-100мл на 10л воды), имеющий температуру не ниже 18 о С, на 10 минут. По окончании дезинфекции посуду отмывают от остатков пищи с помощью щетки, ерша или губки в том же растворе, в котором проводили дезинфекцию. При наличии на посуде сильных жировых загрязнении возможно добавление в процессе мойки необходимого количества средства на щетку, ерш или губку.

3).Ополаскивание в III мойке проточной горячей водой, при t не ниже 65 о С.

4).Просушивание посуды на специальных полках или решетках.

При обработке посуды по эпидемиологическим показаниям столовую посуду освобождают от остатков пищи и погружают в дезинфицирующий раствор, используя режим дезинфекции, рекомендованный для соответствующей инфекции.

После дезинфекции посуду тщательно промывают водой и высушивают.

Обеззараживание остатков пищи от больного проводится по режимам для соответствующих инфекций.

При организации индивидуально-порционной системы питания пациентов («таблет-питание») на раздаточной линии пищеблока для каждого пациента комплектуется индивидуальный поднос с крышкой, с набором порционных блюд. Доставка питания в отделения осуществляется в специальных термоконтейнерах — тележках. Использованная посуда помещается в отдельные отсеки этих же тележек и доставляется на пищеблок.

Мытье посуды в буфетной отделения ручным способом осуществляют в трехсекционных ваннах для столовой посуды и двухсекционных — для стеклянной посуды и столовых приборов.

Мытье посуды производят с учетом её назначения и загрязнения — сначала кружки (стаканы) и чайные ложки, затем тарелки, потом столовые приборы.

Ведра, кастрюли моются отдельно.

Для обработки посуды необходимо использовать моющие, чистящие и дезинфицирующие средства, разрешенные к применению в установленном порядке.

Щетки для мытья посуды и ветошь для протирки столов после окончания работы промывают с обезжиривающими средствами, дезинфицируют по режиму уборочного инвентаря, промывают проточной водой, просушивают и хранят в специально выделенном месте.

После каждой раздачи пищи производят влажную уборку помещений буфетной. Уборочный материал промывается, обеззараживается, просушивается.

Не допускается оставлять в буфетной остатки пищи после ее раздачи больным, а также смешивать пищевые остатки со свежими блюдами.

Раздачу пищи больным производят санитарки-буфетчицы и дежурные медицинские сестры отделения. Раздача пищи должна производиться в халатах с маркировкой «Для раздачи пищи». Не допускается к раздаче пищи младший персонал.

В отделении должны быть вывешены списки разрешенных и запрещенных для передачи продуктов (с указанием их предельного количества).

Ежедневно дежурная медицинская сестра отделения проверяет соблюдение правил и сроков годности (хранения) пищевых продуктов, хранящихся в холодильниках отделения. При обнаружении пищевых продуктов в холодильниках отделения с истекшим сроком годности, хранящихся без упаковок с указанием фамилии больного, а также имеющих признаки порчи, они должны изыматься в пищевые отходы.

О правилах хранения личных пищевых продуктов пациент должен быть информирован при поступлении в отделение.

источник

Предстерилизационная обработка мед.изделий; назначение, методы, средства.

ПСО-это удаление с ИМН белковых, жировых, лекарственных, механический загрязнений для обеспечения эффективной стерилизации.

ПСО необходима, чтобы стерилизация проводилась эффективно. ПСО ИМН осуществляют после их дезинфекции и последующего отмывания остатков дезинфицирующих средств проточной питьевой водой. Все новые инструменты должны пройти ПСО с целью удаления промышленной смазки и механических загрязнений.

Механизированный Методика проведения предстерилизационной очистки механизированным способом должна соответствовать инструкции по эксплуатации, прилагаемой к конкретному оборудованию. Разъемные изделия подвергают предстерилизационной очистке в разобранном виде. При замачивании или кипячении в моющем растворе изделия полностью погружают в раствор моющего средства, заполняя им каналы и полости изделий. Механизированный способ проводится (с помощью спец. оборудования, ультразвуковые ванны, он более качественный и безопасный).

Ручной— (рекомендуемый Отраслевым Стандартом 42-21-2-85). Приказ №770 1985г.

Для начала промывание от дезинфектанта проточной водой 30 сек, до полного исчезновения запаха дезинфектанта. При этом используют емкости из пластмасс, стекла или покрытых эмалью (без повреждений). 5 этапов

1. этап — замачивание в моющем растворе при полном погружении. Первоначальная температура раствора 50 0 С (не поддерживается). Экспозиция 15 минут.

2. этап — по окончании экспозиции осуществляют мойку изделий с помощью ерша, ватно-марлевых тампонов, тканевых салфеток; каналы изделий промывают с помощью шприца. Использование ерша при очистке резиновых изделий не допускается. Каждое изделие моют 0,5 минут.

3. этап – ополаскивание проточной водой не менее 10 минут.

4. этап — ополаскивание дистиллированной водой не менее 0,5 минут.

5. этап – сушка горячим воздухом (в сухожаровом шкафу) при температуре 85 0 С до полного исчезновения влаги.

Средства — Моющие комплексы

Приготовление моющего раствора

—на основе порошков с биодобавками : биолот, эрго, зифа, луч-5гр порошка +995мл дистиллированной воды(или дважды кипяченой, подогреть до 40-45 градусов, экспозиция 15мин.

-на основе порошков без биодобавок

1. порошки без биодобавками: лотос, прогресс, айна. (СМС (синтетическое моющее средство))– 5 грамм

2. Раствор перекиси водорода –

3. Дистиллированная вода до 1литра.

Моющий раствор можно использовать в течение суток до 6 раз и далее до появления розового окрашивания.

Существуют методы, совмещающие этапы дезинфекции и предстерилизационной очистки инструментария.

Данные методы упрощают обработку, снижают количество используемых ёмкостей, сокращают время пребывания инструментов в растворе.

Первый метод

1. Кипячение инструментария в 1,5% растворе СМС (н-р «Лотос”) в течение 15 минут. Моющий раствор: 15 грамм СМС + дистиллированная вода до 1 литра.

2. Мойка изделий в растворе 0,5 минут.

3. Ополаскивание проточной водой не менее 10 минут.

4. Ополаскивание дистиллированной водой не менее 0,5 минут.

Второй метод

1. Кипячение инструментария в 2% растворе соды (20 грамм пищевой соды + дистиллированная вода до 1 литра) в течение 15 минут

2. Мойка изделий в растворе 0,5 минут.

3. Ополаскивание проточной водой не менее 5 минут.

4. Ополаскивание дистиллированной водой не менее 0,5 минут.

Приготовить раствор для обработки стен.

Под санитарной обработкой поверхностей в помещениях ЛПУ подразумевается их очистка от грязи, пыли, субстратов биологического происхождения и дезинфекция, т.е. уничтожение на поверхностях микроорганизмов — возбудителей инфекционных заболеваний. Стены в функциональных помещениях (перевязочные, процедурные) 2 раза в день, послеоперационные, палаты интенсивной терапии – 1 раз в неделю, палаты , коридоры – 1 раз в месяц, туалеты – раз в день.

Обеззараживание рвотных масс, испражнений, остатков пищи гепатитного больного.

Выделения больного (кал, моча, рвотные массы) Текущая — как при заключительной дезинфекции. В больнице содержимое суден, горшков собирают в специальный бак с крышкой и обеззараживают. Заключительная — засыпают сухой хлорной известью или ДТСГК в соотношении 1:2 или 1:5, перемешивают и выдерживают 30 или 60 мин. (соответственно) при гепатите и 1—2 часа при энтеровирусных инфекциях, после чего выливают в канализацию. Если в фекалиях мало жидкости, добавляют воды в соотношении 1:4

Остатки пищи – при текущей, как при заключительной, добавляют воды и кипятят 15 мин. от момента закипания либо засыпают сухой хлорной известью или ДТСГК в соотношении 1:2, 1:5, перемешивают и выдерживают 30—60 мин. (соответственно) при гепатите и 1—2 часа при энтеровирусных инфекциях, после чего сливают в канализацию или выгребную яму.

Текущая дезинфекция в ЛПУ.

Текущая дезинфекция является обязательным противоэпидемическим мероприятием, во всех ЛПУ.

Различают текущую профилактическую и текущую очаговую. Профилактическую дезинфекцию (при отсутствии очага инфекции), проводят как предупредительную меру при отсутствии выявленного источника инфекции для защиты человека от возможного заражения.

Текущую профилактическую дезинфекцию проводят постоянно в ЛПУ и других учреждениях силами персонала.

Очаговая Дезинфекция (при наличии очага инфекции) — является противоэпидемической, её проводят в случае возникновения инфекционного заболевания или при подозрении на него.

Текущая очаговая дезинфекция проводится многократно в условиях ЛПУ или домашних условиях, а также проводят постоянно вокруг пациента или носителя инфекции.

Заключительная очаговая дезинфекция проводится однократно, после госпитализации пациента или перевода в инфекционное отделение, выздоровления или после смерти.

Дезинфекция клеёнок и фартуков.

Двукратно протирают одним из следующих растворов: 1% раствором хлорамина, 0,75% раствором хлорамина с 0,5% моющего средства, 3% раствором перекиси водорода с 0,5% моющего средства, 0,1% раствором дезоксона-1, 0,2% раствором сульфохлорантина, 2% раствором дихлора-1, 0,5% раствором хлордезина (Фартуки и клеенки обрабатываются 1%Хлорамин Б, 3% р-ром Перекись водорода 2% Дихлор-1, Хлордезин 0,5 % путем 2-ух кратного протирания ветошью с интер­валом 15 мин.)

источник

Лабораторные инструменты, иглы, капилляры, предметные стекла, пробирки, меланжеры, счетные камеры, кюветы фотоэлектрометра, пипетки, наконечники, резиновые груши, баллоны и т.д., посуда после каждого использования должны подвергаться дезинфекции.

Использованные изделия промываются в ёмкости с водой. Промывные воды обеззараживаются кипячением в течение 30 минут или засыпают сухой хлорной известью, известью белильной термостойкой, нейтральным гипохлоритом кальция (НГК) в соотношении 200 г на 1 л воды, перемешивают и обеззараживают в течение 60 минут. Промытые изделия кипят в закрытой емкости в воде в течение 30 минут, или в 2% растворе соды, дальнейшая предстерилизационная очистка не проводится.

Лабораторные инструменты могут быть обеззаражены погружением в раствор с дезинфицирующим раствором.

Время обеззараживания – см. инструкцию.
Дезинфицирующие растворы используются однократно.
Емкости для проведения дезинфекции должны быть чётко маркированы, иметь крышки.

При дезинфекции изделий, имеющих внутренние каналы, растворы дезинфицирующего средства в объёме 5-10 мл пропускают через канал с помощью груши для удаления остатков крови, сыворотки и др., после чего изделия полностью погружают в дезинфицирующий раствор во вторую ёмкость.

При погружении инструментов в горизонтальном положении полости каждого инструмента должны быть заполнены дезинфицирующим раствором.

Каждая партия сухих хлорсодержащих дезинфектантов перед использованием должна подвергаться контролю на содержание активного хлора.

Посуда, соприкасающаяся с кровью или сывороткой и не предназначенная для последующего контакта с обследуемым после дезинфекции промывается под проточной водой для полного удаления дезинфектанта и проходит необходимую технологическую обработку.

Ёмкости кювет-анализатора ФП, кюветы измерительной аппаратуры, пластиковые пробирки и т.д. обеззараживаются только 6% раствором перекиси водорода и промываются проточной водой.

С предметных стёкол с фиксированным и окрашенным мазком крови после проведения микроскопии удаляются остатки иммерсионного масла, стёкла кипятятся в мыльном растворе не менее 15 минут до полного отхождения краски, затем промываются под проточной водой, подсушиваются на воздухе и протираются.

Остатки крови, мочи, спинномозговой жидкости и т.п., пробы, содержащие разведенную сыворотку без добавления кислот, щелочей сливают в специальную тару и обеззараживают сухой хлорной известью, известью белильной термостойкой, нейтральным гипохлоритом кальция в соотношении 1:5 в течение часа. При удалении сгустков следует предварительно отделить материал металлическим шпателем, который затем обеззараживается. Посуда из-под мочи, кала обрабатывается по описанной выше методике, но может не подвергаться стерилизации.

При загрязнении кровью или секретами мебели, инвентаря, приборов их следует немедленно дважды протереть ветошью, ватными или марлевыми тампонами, обильно смоченными дезинфицирующими растворами.

Использованную ветошь сбрасывают в специально выделенную ёмкость с дезраствором, маркированную: «Для дезинфекции использованной ветоши».

При загрязнении кровью или секретами спец. одежды, её снимают, предварительно обработав дезраствором участок загрязнения.

Для санитарной обработки помещений КДЛ можно применять только те дезинфицирующие средства, которые официально разрешены Департаментом госсанэпиднадзора Минздрава России, зарегистрированы в Бюро по регистрации лекарственных средств и имеют свидетельство о государственной регистрации, сертификат соответствия и методические указания по применению, утвержденные Департаментом госсанэпиднадзора Минздрава России.
Средства для дезинфекции поверхностей в помещениях КДЛ должны соответствовать следующим требованиям:
1. Обеспечивать гибель возбудителей внутрибольничных инфекций: бактерий, вирусов, грибов — при комнатной температуре;
2. Обладать моющими свойствами или хорошо совмещаться с моющими средствами;
3. Иметь относительно низкую токсичность (4-3 класс опасности) и быть безвредными для окружающей среды;
4. Быть совместимыми с различными видами материалов (не портить обрабатываемые поверхности);
5. Быть стабильными, неогнеопасными, простыми в обращении;
6. Не оказывать фиксирующего действия на органические загрязнения.
В настоящее время в России разрешены к применению 242 средства дезинфекции из различных химических групп, отличающиеся физико-химическими свойствами (форма применения, растворимость, стабильность, наличие моющего действия, значение рН растворов и т.д.), специфической биологической (антимикробной) активностью, токсичностью, назначением, сферой применения. Для достижения противоэпидемического эффекта дезинфекционного мероприятия необходимо правильно выбрать дезинфицирующее средство, соответствующее поставленной задаче. Для этого медицинский персонал должен хорошо знать основные свойства и особенности конкретных дезинфицирующих средств.
Анализ свойств современных дезинфицирующих средств, проведенный в соответствии с перечисленными критериями, показал, что для проведения дезинфекции поверхностей в помещениях КДЛ пригодны, в первую очередь, средства, относящиеся к группе катионных ПАВ (четвертичные аммониевые соединения, третичные амины, производные гуанидинов) и композиции на их основе. Приемлемо применение хлорактивных и кислородактивных средств при наличии у них моющих свойств или при возможности добавления к ним моющих средств непосредственно перед их использованием. Дезинфицирующие средства из других химических групп по тем или иным причинам для обработки поверхностей в помещениях менее пригодны.
Порядок проведения санитарной обработки поверхностей в помещениях (пол, стены, двери и др., жесткая мебель, поверхности аппаратов, приборов, оборудования и т.д.), необходимость использования моющих или дезинфицирующих средств, частота проведения обработок зависят от профиля КДЛ и функционального назначения конкретного помещения.
В помещениях КДЛ любого профиля, в соответствии с действующими нормативными документами, два раза в сутки проводится влажная уборка с применением моющих или моюще-дезинфицирующих средств.
Генеральная уборка диагностических лабораториях проводится 1 раз в неделю, в ванных комнатах, туалетах, подсобных и вспомогательных помещениях — 1 раз в 10-15 дней.
Прежде, чем приступить к работе, медицинский персонал, проводящий обработку, должен внимательно изучить методические указания по применению выбранного конкретного средства, обращая внимание на спектр антимикробного действия (обеспечит ли средство гибель имеющегося на поверхностях микроорганизма), параметры токсичности (можно ли применять средство в присутствии больных, какие использовать меры предосторожности при работе с ним и т.д.), обладает ли средство моющим действием, а также имеющиеся характерные особенности средства.
Растворы дезинфицирующих средств готовят в специальном помещении, оборудованном приточно-вытяжной вентиляцией или в вытяжном шкафу. Персонал, готовящий раствор, должен работать в спецодежде: халат, шапочка, марлевая повязка, резиновые перчатки, а если есть указания, то и респиратор определенной марки и защитные очки.
Растворы дезинфицирующих средств готовят путем смешивания дезинфицирующего средства с водопроводной водой в специальной технической посуде (емкости). Если средство обладает коррозионной активностью (хлорактивные, кислородактивные средства), для рабочих растворов используют емкости из коррозионностойкого материала (пластик, стекло, эмаль без повреждения). Более удобны для применения градуированные емкости, позволяющие дозировать смешиваемые ингредиенты. Необходимое для приготовления рабочего раствора количество дезинфицирующего средства в виде порошка взвешивают на весах или пользуются специальными мерными ложками, которые прилагаются к упаковке средства. Дезинфицирующие средства в виде водных или спиртовых концентратов для приготовления раствора отмеряют с помощью мерного градуированного стакана, пипетки или шприца. Иногда дезинфицирующие средства выпускаются во флаконах с вмонтированной в них или съемной (в виде второй крышки-колпачка) мерной емкостью или в емкостях с насосом.
Для получения нужной концентрации при приготовлении рабочего раствора важно соблюдать рекомендованное соотношение средства и воды (см. Методические указания по применению конкретного средства). Обычно при приготовлении рабочего раствора сначала в емкость наливают требуемое количество воды, затем добавляют к ней дезинфицирующее средство, размешивают и закрывают крышкой до полного растворения. Наиболее удобно готовить рабочие растворы дезинфицирующих средств, производимых в форме таблеток или в разовых упаковках.
В зависимости от химической природы рабочие растворы некоторых средств могут быть приготовлены впрок и храниться в закрытой емкости в специальном помещении до применения определенное время (сутки и более), другие должны быть использованы сразу после приготовления.
Поверхности в помещениях (пол, стены, двери и т.д.), жесткую мебель, поверхности аппаратов, приборов обеззараживают способом протирания ветошью, смоченной в растворе дезинфицирующего средства или способом орошения.
Для обработки поверхностей в помещениях КДЛ более приемлем способ протирания, позволяющий сочетать процесс дезинфекции с мытьем объекта. Для этих целей целесообразно использовать средства, обладающие наряду с антимикробными также моющими свойствами. Для дезинфекции небольших, трудно доступных поверхностей, а также для экстренной обработки небольших по площади поверхностей применяют дезинфицирующие средства способом распыления с помощью ручного распылителя типа «Росинка» или средства в аэрозольной упаковке. При необходимости проведения заключительной дезинфекции в КДЛ, при перепрофилировании кабинета, иногда при проведении генеральных уборок поверхности обрабатывают способом орошения из гидропульта или другого распыляющего устройства, позволяющего обработать помещение большого объема. При использовании для дезинфекции способа орошения медицинский персонал должен строго соблюдать все рекомендуемые меры предосторожности: защитную одежду, респиратор, защитные очки, резиновые перчатки. Такую обработку следует проводить в отсутствие больных.
Воздух и дополнительно поверхности в помещениях КДЛ обеззараживают ультрафиолетовым облучением с помощью бактерицидных облучателей, которые по месту расположения могут быть потолочными, настенными и передвижными, а по конструкции — открытого (применяют в отсутствие больных), закрытого (возможно применение в присутствии людей) и комбинированного типа. Разновидностью закрытого облучателя являются рециркуляторы воздуха с естественным или принудительным прохождением потока воздуха через камеру, внутри которой расположены бактерицидные облучатели, рекомендованные для непрерывного режима облучения в помещениях с постоянным пребыванием людей и высокими требованиями асептики. Режим дезинфекции зависит от мощности облучателя, объема помещения, критериев эффективности его обеззараживания, связанных с его функциональным назначением и определяется в соответствии с «Методическими указаниями по применению бактерицидных ламп для обеззараживания воздуха и поверхностей» №11-16/03-06, утвержденными Минздравмедпромом РФ 28.02.95 г.
Санитарно-техническое оборудование протирают ветошью или чистят щетками (ершами), смоченными в дезинфицирующем растворе или используют чистяще-дезинфицирующие средства в виде порошка, пасты, геля или другой готовой формы, рекомендованные для этих целей и обладающие наряду с дезинфицирующими свойствами хорошими потребительскими качествами (моющими, отбеливающими, чистящими, дезодорирующими). Чаще всего это хлорактивные или кислородсодержащие средства.
Уборочный инвентарь: ветошь, салфетки, губки, мочалки и т.д. — после уборки помещения и обработки объектов замачивают в дезинфицирующем растворе, по истечении экспозиции стирают или моют, прополаскивают водопроводной водой, высушивают и хранят в определенном месте. Использованные ветошь, салфетки и т.д. можно продезинфицировать также способом кипячения. Емкости, из которых производилась обработка помещений, освобождают от использованного дезинфицирующего раствора, моют и высушивают. Ерши, щетки замачивают в дезинфицирующем растворе на определенный срок, после чего споласкивают водопроводной водой. Все средства для уборки помещений должны находиться в отдельной комнате, каждое на своем, для него отведенном месте, и быть промаркированы в соответствии с тем, для обработки какого объекта и какого помещения они предназначены. Для каждого помещения и для отдельных объектов должен быть отдельный уборочный инвентарь.
Генеральные уборки в КДЛ проводятся в соответствии с планом-графиком. В каждом подразделении должно быть определенное количество наборов уборочного инвентаря, в зависимости от числа помещений, в которых должна проводиться уборка. Генеральную уборку проводят в отсутствие больных при открытых фрамугах. Сначала из помещения удаляют мусор и медицинские отходы, собранные в контейнеры. Мебель отодвигают от стен. Тщательно моют стены, двери и т.д., уделяя особое внимание выключателям, дверным ручкам, замкам. Ветошью, смоченной в дезинфицирующем растворе, протирают светильники, арматуру, отопительные батареи, мебель, поверхности аппаратов, приборов, освобождая их от пыли. Один раз в месяц моют изнутри окна (снаружи окна моют 1 раз в полгода). Заканчивают уборку мытьем пола, начиная из дальнего конца комнаты, тщательно вымывая углы, плинтуса и пол около них по всему периметру комнаты, затем моют ее центральную часть. В помещениях, требующих особо строгого соблюдения правил асептики после влажной уборки включают ультрафиолетовые облучатели (время облучения устанавливается в зависимости от различных факторов в соответствии с действующими методическими указаниями — см. выше). Если поверхности в помещениях обрабатывали способом орошения, по истечении дезинфекционной выдержки проводится влажная уборка.
При санитарной обработке КДЛ возможно также использование препаратов для обеззараживания воздуха. Таких как:

Триэтиленгликоль. Аэрозоль получают путем испарения триэтиленгликоля с металлических лотков (размер 20-15 см) при слабом подогреве (с помощью электрической плитки или горелки, помещенных под лотком на расстоянии 20-30 см). Испарение производят в течение 20-40 минут, за сутки до помещения больного в палату. Расход дезинфицирующего вещества 0,1 г на 1 куб.м воздуха.

Концентрированная пищевая молочная кислота. Испарение молочной кислоты производят в течение 20 минут, из расчета 0,01-0,015 мл на 1 куб.м воздуха с поверхности кружочка фильтровальной бумаги, положенного на кольцо

бунзеновского штатива над электрической плиткой на расстоянии 20 см (молочная кислота наносится на фильтровальную бумагу пипеткой).
Раствор перекиси водорода в 0,5% молочной кислоте. Распыление производят в течение 40-50 минут с помощью специальных аэрозольных генераторов или пульверизаторов, пылесоса со специальной насадкой (величина отверстия 0,3-0,5 мм). Расход дезинфицирующего раствора 5 мл на 1 куб.м воздуха.

Примечание: Обеззараживание воздуха палат раствором 3% перекиси водорода с 0,5% молочной кислотой можно проводить как накануне до помещения больного в палату, так и за 2 часа.

Распыление аэрозольного баллона «Букет» производят при расходе аэрозольной смеси 5 г на 1 куб. м воздуха.

Стирка спецодежды на дому категорически запрещается. Смена спецодежды должна осуществляться не менее 2 раз в неделю.

Перчатки после окончания работы обеззараживаются погружением в 3% раствор хлорамина или 6% раствор перекиси водорода на 1 час или кипячением в течение 30 минут.

Одноразовый инструментарий (плашки, наконечники автоматических пипеток и т.д.) обеззараживаются и утилизируются в паровом стерилизаторе при 2,0 кг/см2 (1320С) – 60 минут.

источник

До 70 % среди всех гельминтозов занимает энтеробиоз. Своевременная диагностика заболевания и адекватное лечение гарантирует полное очищение организма от остриц за короткое время. Анализ на энтеробиоз включает в себя микроскопию соскоба, кала и мазка. Наиболее достоверным методом, применяемым при диагностике заболевания с целью обнаружения яиц паразитов, является соскоб и мазок со складок перианальной области.

После спаривания самцы паразитов погибают, а самки теряют способность прикрепляться к стенке кишечника и продвигаются в прямую кишку, выползают из ануса и откладывают яйца в перианальных складках, после чего погибают. Часть самок остриц выделяется во внешнюю среду с испражнениями, поэтому при постановке диагноза решающую роль играют лабораторные исследования соскобов со складок перианальной области и обнаружение самих паразитов в кале. Острицы можно обнаружить при осмотре заднего прохода вечером — через 1 — 2 часа после отхода ко сну.

Зуд в перианальной области является патогомоничным симптомом при острицах. Чаще всего он возникает вечером и ночью, когда самки выползают из прямой кишки наружу для откладывания яиц. Его причиной является секрет, который самки остриц выделяют во время откладывания яиц. Зуд в перианальной области отмечается при геморрое, половом трихомониазе, раке прямой кишки, сахарном диабете, проктите, некоторых заболеваниях печени и почек, нейродермите и кандидамикозе.

Достоверным признаком энтеробиоза является обнаружение яиц паразитов в перианальных складках и самих остриц в испражнениях.

Рис. 1. Острицы в просвете кишечника. Фото сделано при эндоскопическом обследовании.

Рис. 2. Для отложения яиц самки остриц выползают наружу. В этот момент их можно увидеть невооруженным глазом.

При энтеробиозе часть остриц выделяется наружу с каловыми массами. Они хорошо просматриваются на поверхности свежевыделенного кала. Яйца в кале обнаруживаются редко. Поможет обнаружить острицы небольшая клизма с холодной водой. Паразиты попадают вместе с вытекающей водой в емкость (лучше темного цвета).

Анализ кала на энтеробиоз обладает низкой степенью достоверности — около 20%. Его преимущества заключаются в том, что попутно можно выявить другие паразиты.

Некоторые установки по сбору кала на исследование:

• Накануне сбора кала на исследование нельзя принимать слабительные средства и ставить клизму.
• Перед актом дефекации следует опорожнить мочевой пузырь.
• Не подмываться.
• Сбор кала осуществлять в специальный контейнер.
• Забор кала осуществляется мерной ложечкой с трех сторон и середины каловой массы.
• Собранный материал погружается в контейнер.
• Доставлять собранный материал в лабораторию необходимо в течение суток.
• При необходимости емкость с собранным материалом лучше хранить в холодильнике.

Рис. 4. Яйца остриц. Свежий мазок фекалий.

Рис. 5. Емкости для сбора материала на исследование.

Для диагностики энтеробиоза применяется микроскопический метод, материалом для которого служит содержимое соскобов перианальной области и подногтевых пространств, мазков, смывов с предметов и белья, каловые массы. Соскоб и мазки на энтеробиоз применяются с целью обнаружения яиц паразитов.

Соскоб на энтеробиоз лучше проводить в утреннее время. Гигиенические процедуры до взятия анализа не проводятся. При получении отрицательного результата анализ повторяется.

Соскоб на энтеробиоз осуществляется стеклянным шпателем, предварительно смоченным в 50% растворе глицерина или 1% растворе едкого натра. Соскоб производится с области перианальных складок. Далее полученный материал переносится на предметное стекло и направляется в лабораторию.

Рис. 6. Стеклянные одноразовые шпатели для проведения манипуляции соскоба на энтеробиоз.

Рис. 7. Яйца остриц под микроскопом.

Мазок на энтеробиоз применяется с целью обнаружения яиц остриц. Для взятия материала используется ватная палочка, смоченная глицерином, дистиллированной водой или физиологическим раствором. Далее ватной палочкой несколько раз следует провести вокруг ануса и погрузить в контейнер для отправки в лабораторию.

Рис. 8. Мазок на энтеробиоз у детей и взрослых осуществляется с помощью ватной палочки.

источник

Алгоритм «Дезинфекция предметных стекол для исследования мокроты в клинико- иммунологической лаборатории»

Цель: профилактика внутрибольничной инфекции.

Условия: после проведения гематологических и других исследований крови.

Показания: контроль за внутрибольничными инфекциями.

— дезинфицирующие и моющие средства;

— азопирамовая и фенолфталеиновая пробы.

Порядок выполнения:

11.12 Алгоритм «Дезинфекция пробирок в клинико- иммунологической лаборатории»

Цель: профилактика внутрибольничной инфекции.

Условия: после проведения гематологических и других исследований крови.

Показания: контроль за внутрибольничными инфекциями.

— дезинфицирующие и моющие средства;

— азопирамовая и фенолфталеиновая пробы.

Порядок выполнения:

11.13 Алгоритм «Дезинфекция стеклянных банок для мочи

в клинико- иммунологической лаборатории»

Цель: профилактика внутрибольничной инфекции.

Условия: после проведения гематологических и других исследований крови.

Показания: контроль за внутрибольничными инфекциями.

— дезинфицирующие и моющие средства;

— емкость для сбора биологического материала;

Порядок выполнения:

Дата добавления: 2015-02-05 | Просмотры: 3435 | Нарушение авторских прав

источник